ຂອບໃຈທີ່ທ່ານເຂົ້າມາຢ້ຽມຊົມ nature.com. ໂປຣແກຣມທ່ອງເວັບລຸ້ນທີ່ທ່ານກຳລັງໃຊ້ຢູ່ມີການຮອງຮັບ CSS ທີ່ຈຳກັດ. ເພື່ອປະສົບການທີ່ດີທີ່ສຸດ, ພວກເຮົາແນະນຳໃຫ້ໃຊ້ໂປຣແກຣມທ່ອງເວັບລຸ້ນລ່າສຸດ (ຫຼື ປິດໂໝດຄວາມເຂົ້າກັນໄດ້ໃນ Internet Explorer). ນອກຈາກນັ້ນ, ເພື່ອຮັບປະກັນການຮອງຮັບຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງ, ເວັບໄຊນີ້ຈະບໍ່ມີຮູບແບບ ຫຼື JavaScript.
ໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດ (H2S) ມີຜົນກະທົບທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ພະຍາດຫຼາຍຢ່າງຕໍ່ຮ່າງກາຍຂອງມະນຸດ. ໂຊດຽມໄຮໂດຣຊັນໄຟດ (NaHS) ຖືກນຳໃຊ້ຢ່າງກວ້າງຂວາງເປັນເຄື່ອງມືທາງດ້ານການຢາເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງ H2S ໃນການທົດລອງທາງຊີວະວິທະຍາ. ເຖິງແມ່ນວ່າການສູນເສຍ H2S ຈາກສານລະລາຍ NaHS ໃຊ້ເວລາພຽງແຕ່ສອງສາມນາທີ, ແຕ່ສານລະລາຍ NaHS ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນສານປະກອບໃຫ້ H2S ໃນນໍ້າດື່ມໃນການສຶກສາກ່ຽວກັບສັດບາງຢ່າງ. ການສຶກສານີ້ໄດ້ສືບສວນວ່ານໍ້າດື່ມທີ່ມີຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS 30 μM ທີ່ກຽມໄວ້ໃນຂວດໜູ/ໜູສາມາດຄົງຕົວໄດ້ຢ່າງໜ້ອຍ 12–24 ຊົ່ວໂມງ, ຕາມທີ່ຜູ້ຂຽນບາງຄົນແນະນໍາ. ກະກຽມສານລະລາຍ NaHS (30 μM) ໃນນໍ້າດື່ມ ແລະ ຖອກໃສ່ຂວດນໍ້າໜູ/ໜູທັນທີ. ຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກເກັບມາຈາກປາຍຂວດ ແລະ ພາຍໃນຂວດນໍ້າທີ່ອຸນຫະພູມ 0, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 12 ແລະ 24 ຊົ່ວໂມງເພື່ອວັດແທກປະລິມານຊູນໄຟດໂດຍໃຊ້ວິທີການເມທິລີນສີຟ້າ. ນອກຈາກນັ້ນ, ໜູເພດຜູ້ ແລະ ເພດແມ່ໄດ້ຖືກສັກ NaHS (30 μM) ເປັນເວລາສອງອາທິດ ແລະ ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຊູນໄຟດ໌ໃນເລືອດໄດ້ຖືກວັດແທກທຸກໆມື້ໃນລະຫວ່າງອາທິດທຳອິດ ແລະ ໃນຕອນທ້າຍຂອງອາທິດທີສອງ. ສານລະລາຍ NaHS ໃນຕົວຢ່າງທີ່ໄດ້ມາຈາກປາຍຂວດນ້ຳແມ່ນບໍ່ໝັ້ນຄົງ; ມັນຫຼຸດລົງ 72% ແລະ 75% ຫຼັງຈາກ 12 ແລະ 24 ຊົ່ວໂມງຕາມລຳດັບ. ໃນຕົວຢ່າງທີ່ໄດ້ຈາກພາຍໃນຂວດນ້ຳ, ການຫຼຸດລົງຂອງ NaHS ບໍ່ສຳຄັນພາຍໃນ 2 ຊົ່ວໂມງ; ແນວໃດກໍ່ຕາມ, ມັນຫຼຸດລົງ 47% ແລະ 72% ຫຼັງຈາກ 12 ແລະ 24 ຊົ່ວໂມງຕາມລຳດັບ. ການສັກ NaHS ບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ລະດັບຊູນໄຟດ໌ໃນເລືອດຂອງໜູເພດຜູ້ ແລະ ເພດແມ່. ສະຫຼຸບແລ້ວ, ສານລະລາຍ NaHS ທີ່ກຽມຈາກນ້ຳດື່ມບໍ່ຄວນໃຊ້ສຳລັບການບໍລິຈາກ H2S ເພາະວ່າສານລະລາຍບໍ່ໝັ້ນຄົງ. ເສັ້ນທາງການບໍລິຫານນີ້ຈະເຮັດໃຫ້ສັດໄດ້ຮັບ NaHS ໃນປະລິມານທີ່ບໍ່ສະໝໍ່າສະເໝີ ແລະ ໜ້ອຍກວ່າທີ່ຄາດໄວ້.
ໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດ໌ (H2S) ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນສານພິດຕັ້ງແຕ່ປີ 1700; ເຖິງຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ບົດບາດທີ່ເປັນໄປໄດ້ຂອງມັນເປັນໂມເລກຸນສັນຍານຊີວະພາບພາຍໃນໄດ້ຖືກອະທິບາຍໂດຍ Abe ແລະ Kimura ໃນປີ 1996. ໃນໄລຍະສາມທົດສະວັດທີ່ຜ່ານມາ, ໜ້າທີ່ຫຼາຍຢ່າງຂອງ H2S ໃນລະບົບຕ່າງໆຂອງມະນຸດໄດ້ຖືກອະທິບາຍຢ່າງຈະແຈ້ງ, ເຊິ່ງນໍາໄປສູ່ການຮັບຮູ້ວ່າໂມເລກຸນຜູ້ໃຫ້ H2S ອາດຈະມີການນໍາໃຊ້ທາງດ້ານການແພດໃນການປິ່ນປົວຫຼືການຈັດການພະຍາດບາງຊະນິດ; ເບິ່ງ Chirino et al. ສໍາລັບການທົບທວນຄືນທີ່ຜ່ານມາ.
ໂຊດຽມໄຮໂດຣຊັນໄຟດ໌ (NaHS) ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ຢ່າງກວ້າງຂວາງເປັນເຄື່ອງມືທາງດ້ານການຢາເພື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງ H2S ໃນການສຶກສາກ່ຽວກັບການເພາະເລี้ยงຈຸລັງ ແລະ ສັດຫຼາຍໆຄັ້ງ5,6,7,8. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, NaHS ບໍ່ແມ່ນຜູ້ໃຫ້ H2S ທີ່ດີເພາະມັນຖືກປ່ຽນເປັນ H2S/HS- ໃນສານລະລາຍຢ່າງໄວວາ, ປົນເປື້ອນດ້ວຍໂພລີຊັນໄຟດ໌ໄດ້ງ່າຍ, ແລະ ຜຸພັງ ແລະ ລະເຫີຍໄດ້ງ່າຍ4,9. ໃນການທົດລອງທາງຊີວະວິທະຍາຫຼາຍໆຄັ້ງ, NaHS ລະລາຍໃນນໍ້າ, ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ເກີດການລະເຫີຍແບບ passive ແລະ ການສູນເສຍ H2S10,11,12, ການຜຸພັງແບບ spontaneous ຂອງ H2S11,12,13, ແລະ photolysis14. ຊູນໄຟດ໌ໃນສານລະລາຍເດີມຈະສູນເສຍໄປຢ່າງໄວວາເນື່ອງຈາກການລະເຫີຍຂອງ H2S11. ໃນພາຊະນະເປີດ, ເຄິ່ງຊີວິດ (t1/2) ຂອງ H2S ແມ່ນປະມານ 5 ນາທີ, ແລະຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງມັນຫຼຸດລົງປະມານ 13% ຕໍ່ນາທີ10. ເຖິງແມ່ນວ່າການສູນເສຍໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດ໌ຈາກສານລະລາຍ NaHS ໃຊ້ເວລາພຽງແຕ່ສອງສາມນາທີ, ແຕ່ການສຶກສາກ່ຽວກັບສັດບາງຊະນິດໄດ້ໃຊ້ສານລະລາຍ NaHS ເປັນແຫຼ່ງຂອງໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດ໌ໃນນ້ຳດື່ມເປັນເວລາ 1–21 ອາທິດ, ໂດຍທົດແທນສານລະລາຍທີ່ມີ NaHS ທຸກໆ 12–24 ຊົ່ວໂມງ.15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26 ການປະຕິບັດນີ້ບໍ່ສອດຄ່ອງກັບຫຼັກການຂອງການຄົ້ນຄວ້າທາງວິທະຍາສາດ, ເນື່ອງຈາກປະລິມານຢາຄວນອີງໃສ່ການນຳໃຊ້ໃນຊະນິດອື່ນໆ, ໂດຍສະເພາະມະນຸດ.27
ການຄົ້ນຄວ້າກ່ອນການທົດລອງທາງຄລີນິກໃນຊີວະວິທະຍາມີຈຸດປະສົງເພື່ອປັບປຸງຄຸນນະພາບຂອງການດູແລຄົນເຈັບ ຫຼື ຜົນການປິ່ນປົວ. ເຖິງຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ຜົນໄດ້ຮັບຂອງການສຶກສາໃນສັດສ່ວນໃຫຍ່ຍັງບໍ່ທັນໄດ້ຖືກແປເປັນມະນຸດເທື່ອ28,29,30. ໜຶ່ງໃນເຫດຜົນຂອງຄວາມລົ້ມເຫຼວໃນການແປນີ້ແມ່ນການຂາດຄວາມສົນໃຈຕໍ່ຄຸນນະພາບວິທີການຂອງການສຶກສາໃນສັດ30. ດັ່ງນັ້ນ, ຈຸດປະສົງຂອງການສຶກສານີ້ແມ່ນເພື່ອສືບສວນວ່າສານລະລາຍ NaHS 30 μM ທີ່ກະກຽມໃນຂວດນ້ຳໜູ/ໜູສາມາດຄົງຕົວຢູ່ໃນນ້ຳດື່ມໄດ້ເປັນເວລາ 12-24 ຊົ່ວໂມງ, ຕາມທີ່ໄດ້ອ້າງ ຫຼື ແນະນຳໃນບາງການສຶກສາ.
ການທົດລອງທັງໝົດໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້ໄດ້ດຳເນີນການຕາມຄຳແນະນຳທີ່ໄດ້ເຜີຍແຜ່ສຳລັບການດູແລ ແລະ ການນຳໃຊ້ສັດທົດລອງໃນອີຣ່ານ31. ບົດລາຍງານການທົດລອງທັງໝົດໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້ຍັງໄດ້ປະຕິບັດຕາມຄຳແນະນຳຂອງ ARRIVE32. ຄະນະກຳມະການຈັນຍາບັນຂອງສະຖາບັນວິທະຍາສາດຕ່ອມไร้ท่อ, ມະຫາວິທະຍາໄລວິທະຍາສາດການແພດ Shahid Beheshti, ໄດ້ອະນຸມັດຂັ້ນຕອນການທົດລອງທັງໝົດໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້.
ຊິ້ງອາເຊເຕດໄດໄຮເດຣດ (CAS: 5970-45-6) ແລະ ເຟຣຣິກຄລໍໄຣດ໌ໄຮດຣັດ (CAS: 7705-08-0) ໄດ້ຊື້ມາຈາກ Biochem, Chemopahrama (Cosne-sur-Loire, ປະເທດຝຣັ່ງ). ໂຊດຽມໄຮໂດຣຊູນໄຟດ໌ (CAS: 207683-19-0) ແລະ N,N-dimethyl-p-phenylenediamine (DMPD) (CAS: 535-47-0) ໄດ້ຊື້ມາຈາກ Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA). ໄອໂຊຟລູຣານ ໄດ້ຊື້ມາຈາກ Piramal (Bethlehem, PA, USA). ກົດໄຮໂດຣຄລໍຣິກ (HCl) ໄດ້ຊື້ມາຈາກ Merck (Darmstadt, ເຢຍລະມັນ).
ກະກຽມສານລະລາຍຂອງ NaHS (30 μM) ໃນນ້ຳດື່ມ ແລະ ຖອກໃສ່ຂວດນ້ຳໜູ/ໜູທັນທີ. ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນນີ້ໄດ້ຖືກເລືອກໂດຍອີງໃສ່ສິ່ງພິມຈຳນວນຫຼາຍທີ່ໃຊ້ NaHS ເປັນແຫຼ່ງຂອງ H2S; ເບິ່ງພາກສົນທະນາ. NaHS ແມ່ນໂມເລກຸນທີ່ມີນ້ຳທີ່ສາມາດບັນຈຸນ້ຳທີ່ມີນ້ຳຫຼາຍຊະນິດ (ເຊັ່ນ: NaHS•xH2O); ອີງຕາມຜູ້ຜະລິດ, ອັດຕາສ່ວນຂອງ NaHS ທີ່ໃຊ້ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາແມ່ນ 70.7% (ເຊັ່ນ: NaHS•1.3 H2O), ແລະ ພວກເຮົາໄດ້ຄຳນຶງເຖິງຄ່ານີ້ໃນການຄິດໄລ່ຂອງພວກເຮົາ, ບ່ອນທີ່ພວກເຮົາໄດ້ໃຊ້ນ້ຳໜັກໂມເລກຸນ 56.06 g/mol, ເຊິ່ງເປັນນ້ຳໜັກໂມເລກຸນຂອງ NaHS ທີ່ບໍ່ມີນ້ຳ. ນ້ຳທີ່ມີນ້ຳ (ເຊິ່ງເອີ້ນວ່ານ້ຳຂອງການເກີດຜລຶກ) ແມ່ນໂມເລກຸນນ້ຳທີ່ປະກອບເປັນໂຄງສ້າງຜລຶກ33. ໄຮເດຣດມີຄຸນສົມບັດທາງກາຍະພາບ ແລະ ເທີໂມໄດນາມິກທີ່ແຕກຕ່າງກັນເມື່ອທຽບກັບແອນໄຮເດຣດ34.
ກ່ອນທີ່ຈະຕື່ມ NaHS ໃສ່ນ້ຳດື່ມ, ໃຫ້ວັດແທກຄ່າ pH ແລະອຸນຫະພູມຂອງຕົວລະລາຍ. ຖອກສານລະລາຍ NaHS ລົງໃນຂວດນ້ຳໜູ/ໜູໃນກະຕ່າສັດທັນທີ. ຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກເກັບມາຈາກປາຍຂວດ ແລະ ຈາກພາຍໃນຂວດນ້ຳທີ່ 0, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 12, ແລະ 24 ຊົ່ວໂມງ ເພື່ອວັດແທກປະລິມານຊູນໄຟດ໌. ການວັດແທກຊູນໄຟດ໌ໄດ້ຖືກປະຕິບັດທັນທີຫຼັງຈາກການເກັບຕົວຢ່າງແຕ່ລະຄັ້ງ. ພວກເຮົາໄດ້ຮັບຕົວຢ່າງຈາກປາຍທໍ່ ເພາະວ່າການສຶກສາບາງຢ່າງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຂະໜາດຮູຂຸມຂົນນ້ອຍຂອງທໍ່ນ້ຳສາມາດຫຼຸດຜ່ອນການລະເຫີຍຂອງ H2S ໄດ້15,19. ບັນຫານີ້ເບິ່ງຄືວ່າຈະນຳໃຊ້ກັບສານລະລາຍໃນຂວດເຊັ່ນກັນ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ນີ້ບໍ່ແມ່ນກໍລະນີສຳລັບສານລະລາຍໃນຄໍຂອງຂວດນ້ຳ, ເຊິ່ງມີອັດຕາການລະເຫີຍສູງກວ່າ ແລະ ກຳລັງຜຸພັງ; ໃນຄວາມເປັນຈິງ, ສັດໄດ້ດື່ມນ້ຳນີ້ກ່ອນ.
ໜູ Wistar ເພດຜູ້ ແລະ ເພດແມ່ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ໃນການສຶກສາ. ໜູເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກລ້ຽງໄວ້ໃນກະຊັງ polypropylene (ໜູ 2–3 ໂຕຕໍ່ກະຊັງ) ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂມາດຕະຖານ (ອຸນຫະພູມ 21–26 °C, ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນ 32–40%) ດ້ວຍແສງສະຫວ່າງ 12 ຊົ່ວໂມງ (7 ໂມງເຊົ້າ ຫາ 7 ໂມງແລງ) ແລະ 12 ຊົ່ວໂມງໃນຄວາມມືດ (7 ໂມງແລງ ຫາ 7 ໂມງເຊົ້າ). ໜູມີນໍ້າປະປາທີ່ສາມາດເຂົ້າເຖິງໄດ້ຢ່າງເສລີ ແລະ ໄດ້ຮັບອາຫານຈາກງົວມາດຕະຖານ (ບໍລິສັດ Khorak Dam Pars, Tehran, Iran). ໜູ Wistar ເພດແມ່ທີ່ມີອາຍຸກົງກັນ (6 ເດືອນ) (n=10, ນໍ້າໜັກຕົວ: 190–230 g) ແລະ ເພດຜູ້ (n=10, ນໍ້າໜັກຕົວ: 320–370 g) ໄດ້ຖືກແບ່ງອອກເປັນກຸ່ມຄວບຄຸມ ແລະ ກຸ່ມທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS (30 μM) (n=5 ຕໍ່ກຸ່ມ). ເພື່ອກໍານົດຂະໜາດຕົວຢ່າງ, ພວກເຮົາໄດ້ໃຊ້ວິທີການ KISS (Keep It Simple, Stupid), ເຊິ່ງລວມເອົາປະສົບການທີ່ຜ່ານມາ ແລະ ການວິເຄາະພະລັງງານ35. ພວກເຮົາໄດ້ດຳເນີນການສຶກສາທົດລອງກັບໜູ 3 ໂຕ ແລະ ກຳນົດລະດັບຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດໃນເລືອດໂດຍສະເລ່ຍ ແລະ ຄ່າຜັນປ່ຽນມາດຕະຖານ (8.1 ± 0.81 μM). ຫຼັງຈາກນັ້ນ, ໂດຍພິຈາລະນາພະລັງງານ 80% ແລະ ສົມມຸດວ່າລະດັບຄວາມສຳຄັນສອງດ້ານ 5%, ພວກເຮົາໄດ້ກຳນົດຂະໜາດຕົວຢ່າງເບື້ອງຕົ້ນ (n = 5 ໂດຍອີງໃສ່ເອກະສານກ່ອນໜ້ານີ້) ທີ່ກົງກັບຂະໜາດຜົນກະທົບມາດຕະຖານ 2.02 ດ້ວຍຄ່າທີ່ກຳນົດໄວ້ລ່ວງໜ້າທີ່ແນະນຳໂດຍ Festing ສຳລັບການຄິດໄລ່ຂະໜາດຕົວຢ່າງຂອງສັດທົດລອງ35. ຫຼັງຈາກຄູນຄ່ານີ້ດ້ວຍ SD (2.02 × 0.81), ຂະໜາດຜົນກະທົບທີ່ຄາດຄະເນໄດ້ (1.6 μM) ແມ່ນ 20%, ເຊິ່ງເປັນທີ່ຍອມຮັບໄດ້. ນີ້ໝາຍຄວາມວ່າ n = 5/ກຸ່ມແມ່ນພຽງພໍທີ່ຈະກວດພົບການປ່ຽນແປງສະເລ່ຍ 20% ລະຫວ່າງກຸ່ມ. ໜູໄດ້ຖືກແບ່ງອອກເປັນກຸ່ມຄວບຄຸມ ແລະ ກຸ່ມທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaSH ໂດຍໃຊ້ຟັງຊັນແບບສຸ່ມຂອງຊອບແວ Excel 36 (ຮູບທີ 1 ເພີ່ມເຕີມ). ການປິດບັງໄດ້ຖືກປະຕິບັດໃນລະດັບຜົນໄດ້ຮັບ, ແລະ ນັກຄົ້ນຄວ້າທີ່ປະຕິບັດການວັດແທກທາງຊີວະເຄມີບໍ່ຮູ້ເຖິງການມອບໝາຍກຸ່ມ.
ກຸ່ມ NaHS ຂອງທັງສອງເພດໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍສານລະລາຍ NaHS 30 μM ທີ່ກຽມໄວ້ໃນນ້ຳດື່ມເປັນເວລາ 2 ອາທິດ; ສານລະລາຍສົດໄດ້ຖືກສະໜອງທຸກໆ 24 ຊົ່ວໂມງ, ໃນລະຫວ່າງນັ້ນນ້ຳໜັກຕົວໄດ້ຖືກວັດແທກ. ຕົວຢ່າງເລືອດໄດ້ຖືກເກັບຈາກປາຍຫາງຂອງໜູທັງໝົດພາຍໃຕ້ການໃຊ້ຢາສະລົບ isoflurane ທຸກໆມື້ເວັ້ນວັນໃນຕອນທ້າຍຂອງອາທິດທຳອິດ ແລະ ອາທິດທີສອງ. ຕົວຢ່າງເລືອດໄດ້ຖືກປั่นແຍກທີ່ 3000 g ເປັນເວລາ 10 ນາທີ, ເຊລັ່ມໄດ້ຖືກແຍກອອກ ແລະ ເກັບຮັກສາໄວ້ທີ່ –80°C ສຳລັບການວັດແທກ urea ໃນເຊລັ່ມ, creatinine (Cr), ແລະ sulfide ທັງໝົດໃນເຊລັ່ມຕໍ່ມາ. urea ໃນເຊລັ່ມໄດ້ຖືກກຳນົດໂດຍວິທີການ enzymatic urease, ແລະ creatinine ໃນເຊລັ່ມໄດ້ຖືກກຳນົດໂດຍວິທີການ photometric Jaffe ໂດຍໃຊ້ຊຸດທີ່ມີຢູ່ໃນທ້ອງຕະຫຼາດ (ບໍລິສັດ Man, ເຕເຮຣານ, ອີຣ່ານ) ແລະ ເຄື່ອງວິເຄາະອັດຕະໂນມັດ (Selectra E, ເລກລຳດັບ 0-2124, ເນເທີແລນ). ສຳປະສິດການປ່ຽນແປງພາຍໃນ ແລະ ລະຫວ່າງການວິເຄາະສຳລັບ urea ແລະ Cr ແມ່ນໜ້ອຍກວ່າ 2.5%.
ວິທີການເມທິລີນສີຟ້າ (MB) ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອວັດແທກຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດໃນນໍ້າດື່ມ ແລະ ເຊຣັມທີ່ມີ NaHS; MB ແມ່ນວິທີການທີ່ໃຊ້ຫຼາຍທີ່ສຸດສໍາລັບການວັດແທກຊູນໄຟດ໌ໃນສານລະລາຍປະລິມານຫຼາຍ ແລະ ຕົວຢ່າງທາງຊີວະພາບ11,37. ວິທີການ MB ສາມາດຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອປະເມີນສະລອຍຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດ38 ແລະ ວັດແທກຊູນໄຟດ໌ອະນົງຄະທາດໃນຮູບແບບຂອງ H2S, HS- ແລະ S2 ໃນໄລຍະນໍ້າ39. ໃນວິທີການນີ້, ຊູນຟູຣ໌ຈະຖືກຕົກຕະກອນເປັນສັງກະສີຊູນໄຟດ໌ (ZnS) ໃນເວລາທີ່ມີສັງກະສີອາເຊເຕດ11,38. ການຕົກຕະກອນສັງກະສີອາເຊເຕດແມ່ນວິທີການທີ່ໃຊ້ກັນຢ່າງກວ້າງຂວາງທີ່ສຸດສໍາລັບການແຍກຊູນໄຟດ໌ອອກຈາກໂຄຣໂມຟໍອື່ນໆ11. ZnS ໄດ້ຖືກລະລາຍຄືນໃໝ່ໂດຍໃຊ້ HCl11 ພາຍໃຕ້ສະພາບທີ່ເປັນກົດແຮງ. ຊູນໄຟດ໌ປະຕິກິລິຍາກັບ DMPD ໃນອັດຕາສ່ວນສະໂຕກິໂອເມຕຣິກ 1:2 ໃນປະຕິກິລິຍາທີ່ຖືກເລັ່ງໂດຍເຟຣຣິກຄລໍໄຣດ໌ (Fe3+ ເຮັດໜ້າທີ່ເປັນຕົວແທນອົກຊິໄດ) ເພື່ອສ້າງສີຍ້ອມ MB, ເຊິ່ງຖືກກວດພົບໂດຍວິທີສະເປກໂຕຣໂຟໂຕມິເຕີທີ່ 670 nm40,41. ຂີດຈຳກັດການກວດຈັບຂອງວິທີການ MB ແມ່ນປະມານ 1 μM11.
ໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້, 100 μL ຂອງແຕ່ລະຕົວຢ່າງ (ສານລະລາຍ ຫຼື ເຊຣັມ) ໄດ້ຖືກເພີ່ມເຂົ້າໃນທໍ່; ຫຼັງຈາກນັ້ນ, 200 μL ຂອງສັງກະສີອາເຊເຕດ (1% w/v ໃນນ້ຳກັ່ນ), 100 μL ຂອງ DMPD (20 mM ໃນ 7.2 M HCl), ແລະ 133 μL ຂອງ FeCl3 (30 mM ໃນ 1.2 M HCl) ໄດ້ຖືກເພີ່ມເຂົ້າ. ສ່ວນປະສົມດັ່ງກ່າວໄດ້ຖືກບົ່ມຢູ່ທີ່ 37°C ໃນຄວາມມືດເປັນເວລາ 30 ນາທີ. ສານລະລາຍໄດ້ຖືກປั่นແຍກທີ່ 10,000 g ເປັນເວລາ 10 ນາທີ, ແລະ ການດູດຊຶມຂອງນ້ຳເທິງໜ້ານ້ຳໄດ້ຖືກອ່ານຢູ່ທີ່ 670 nm ໂດຍໃຊ້ເຄື່ອງອ່ານໄມໂຄຣແຜ່ນ (BioTek, MQX2000R2, Winooski, VT, USA). ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຊູນຟາຍໄດ້ຖືກກຳນົດໂດຍໃຊ້ເສັ້ນໂຄ້ງການປັບທຽບຂອງ NaHS (0–100 μM) ໃນ ddH2O (ຮູບເພີ່ມເຕີມ 2). ສານລະລາຍທັງໝົດທີ່ໃຊ້ສຳລັບການວັດແທກແມ່ນໄດ້ຖືກກະກຽມໃໝ່ໆ. ຄ່າສຳປະສິດການປ່ຽນແປງພາຍໃນ ແລະ ລະຫວ່າງການວິເຄາະສຳລັບການວັດແທກຊູນໄຟດ໌ແມ່ນ 2.8% ແລະ 3.4% ຕາມລຳດັບ. ພວກເຮົາຍັງໄດ້ກຳນົດຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດທີ່ກູ້ຄືນມາຈາກຕົວຢ່າງນ້ຳດື່ມ ແລະ ເຊລັ່ມທີ່ມີໂຊດຽມໄທໂອຊັນເຟດໂດຍໃຊ້ວິທີການຕົວຢ່າງທີ່ເສີມສານ42. ຄ່າທີ່ກູ້ຄືນມາຈາກຕົວຢ່າງນ້ຳດື່ມ ແລະ ເຊລັ່ມທີ່ມີໂຊດຽມໄທໂອຊັນເຟດແມ່ນ 91 ± 1.1% (n = 6) ແລະ 93 ± 2.4% (n = 6) ຕາມລຳດັບ.
ການວິເຄາະທາງສະຖິຕິໄດ້ຖືກປະຕິບັດໂດຍໃຊ້ຊອບແວ GraphPad Prism ເວີຊັນ 8.0.2 ສຳລັບ Windows (ຊອບແວ GraphPad, San Diego, CA, ອາເມລິກາ, www.graphpad.com). ການທົດສອບ t ຄູ່ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອປຽບທຽບອຸນຫະພູມ ແລະ pH ຂອງນໍ້າດື່ມກ່ອນ ແລະ ຫຼັງການເພີ່ມ NaHS. ການສູນເສຍ H2S ໃນສານລະລາຍທີ່ມີ NaHS ໄດ້ຖືກຄິດໄລ່ເປັນເປີເຊັນຫຼຸດລົງຈາກການດູດຊຶມເບື້ອງຕົ້ນ, ແລະ ເພື່ອປະເມີນວ່າການສູນເສຍມີຄວາມໝາຍທາງສະຖິຕິຫຼືບໍ່, ພວກເຮົາໄດ້ປະຕິບັດ ANOVA ແບບວັດແທກຊ້ຳໆທາງດຽວ ຕາມດ້ວຍການທົດສອບການປຽບທຽບຫຼາຍຄັ້ງຂອງ Dunnett. ນໍ້າໜັກຕົວ, ຢູເຣຍໃນເລືອດ, creatinine ໃນເລືອດ, ແລະ ຊູນໄຟໃນເລືອດທັງໝົດຕາມການເວລາໄດ້ຖືກປຽບທຽບລະຫວ່າງໜູຄວບຄຸມ ແລະ ໜູທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS ຂອງເພດທີ່ແຕກຕ່າງກັນໂດຍໃຊ້ ANOVA ປະສົມສອງທາງ (ລະຫວ່າງພາຍໃນ) ຕາມດ້ວຍການທົດສອບ Bonferroni post hoc. ຄ່າ P ສອງຫາງ < 0.05 ຖືກພິຈາລະນາວ່າມີຄວາມໝາຍທາງສະຖິຕິ.
ຄ່າ pH ຂອງນ້ຳດື່ມແມ່ນ 7.60 ± 0.01 ກ່ອນການເພີ່ມ NaHS ແລະ 7.71 ± 0.03 ຫຼັງຈາກການເພີ່ມ NaHS (n = 13, p = 0.0029). ອຸນຫະພູມຂອງນ້ຳດື່ມແມ່ນ 26.5 ± 0.2 ແລະຫຼຸດລົງເປັນ 26.2 ± 0.2 ຫຼັງຈາກການເພີ່ມ NaHS (n = 13, p = 0.0128). ກະກຽມສານລະລາຍ NaHS 30 μM ໃນນ້ຳດື່ມ ແລະເກັບຮັກສາໄວ້ໃນຂວດນ້ຳ. ສານລະລາຍ NaHS ບໍ່ໝັ້ນຄົງ ແລະ ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງມັນຫຼຸດລົງຕາມການເວລາ. ເມື່ອເກັບຕົວຢ່າງຈາກຄໍຂອງຂວດນ້ຳ, ສັງເກດເຫັນການຫຼຸດລົງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ (68.0%) ພາຍໃນຊົ່ວໂມງທຳອິດ, ແລະປະລິມານ NaHS ໃນສານລະລາຍຫຼຸດລົງ 72% ແລະ 75% ຫຼັງຈາກ 12 ແລະ 24 ຊົ່ວໂມງຕາມລຳດັບ. ໃນຕົວຢ່າງທີ່ໄດ້ຈາກຂວດນ້ຳ, ການຫຼຸດລົງຂອງ NaHS ບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງພາຍໃນ 2 ຊົ່ວໂມງ, ແຕ່ຫຼັງຈາກ 12 ແລະ 24 ຊົ່ວໂມງມັນໄດ້ຫຼຸດລົງ 47% ແລະ 72% ຕາມລຳດັບ. ຂໍ້ມູນເຫຼົ່ານີ້ຊີ້ບອກວ່າອັດຕາສ່ວນຂອງ NaHS ໃນສານລະລາຍ 30 μM ທີ່ກະກຽມໃນນ້ຳດື່ມໄດ້ຫຼຸດລົງເຫຼືອປະມານໜຶ່ງສ່ວນສີ່ຂອງຄ່າເບື້ອງຕົ້ນຫຼັງຈາກ 24 ຊົ່ວໂມງ, ໂດຍບໍ່ຄຳນຶງເຖິງສະຖານທີ່ເກັບຕົວຢ່າງ (ຮູບທີ 1).
ຄວາມໝັ້ນຄົງຂອງສານລະລາຍ NaHS (30 μM) ໃນນ້ຳດື່ມໃນຂວດໜູ/ໜູ. ຫຼັງຈາກການກະກຽມສານລະລາຍແລ້ວ, ຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກເກັບມາຈາກປາຍຂວດ ແລະ ພາຍໃນຂອງຂວດນ້ຳ. ຂໍ້ມູນຖືກນຳສະເໜີເປັນຄ່າສະເລ່ຍ ± SD (n = 6/ກຸ່ມ). * ແລະ #, P < 0.05 ເມື່ອທຽບກັບເວລາ 0. ຮູບຖ່າຍຂອງຂວດນ້ຳສະແດງໃຫ້ເຫັນປາຍ (ພ້ອມການເປີດ) ແລະ ໂຄງສ້າງຂອງຂວດ. ປະລິມານປາຍແມ່ນປະມານ 740 μL.
ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS ໃນສານລະລາຍ 30 μM ທີ່ກຽມໄວ້ໃໝ່ໆແມ່ນ 30.3 ± 0.4 μM (ຊ່ວງ: 28.7–31.9 μM, n = 12). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຫຼັງຈາກ 24 ຊົ່ວໂມງ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS ຫຼຸດລົງເປັນຄ່າທີ່ຕ່ຳກວ່າ (ຄ່າສະເລ່ຍ: 3.0 ± 0.6 μM). ດັ່ງທີ່ສະແດງຢູ່ໃນຮູບທີ 2, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS ທີ່ໜູໄດ້ຮັບບໍ່ຄົງທີ່ໃນລະຫວ່າງການສຶກສາ.
ນ້ຳໜັກຕົວຂອງໜູເພດແມ່ໄດ້ເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕາມການເວລາ (ຈາກ 205.2 ± 5.2 ກຣາມ ເປັນ 213.8 ± 7.0 ກຣາມ ໃນກຸ່ມຄວບຄຸມ ແລະ ຈາກ 204.0 ± 8.6 ກຣາມ ເປັນ 211.8 ± 7.5 ກຣາມ ໃນກຸ່ມທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS); ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS ບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ນ້ຳໜັກຕົວ (ຮູບທີ 3). ນ້ຳໜັກຕົວຂອງໜູເພດຜູ້ໄດ້ເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕາມການເວລາ (ຈາກ 338.6 ± 8.3 ກຣາມ ເປັນ 352.4 ± 6.0 ກຣາມ ໃນກຸ່ມຄວບຄຸມ ແລະ ຈາກ 352.4 ± 5.9 ກຣາມ ເປັນ 363.2 ± 4.3 ກຣາມ ໃນກຸ່ມທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS); ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS ບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ນ້ຳໜັກຕົວ (ຮູບທີ 3).
ການປ່ຽນແປງຂອງນ້ຳໜັກຕົວໃນໜູເພດແມ່ ແລະ ເພດຜູ້ຫຼັງຈາກການໃຫ້ NaHS (30 μM). ຂໍ້ມູນຖືກນຳສະເໜີເປັນຄ່າສະເລ່ຍ ± SEM ແລະ ໄດ້ຖືກປຽບທຽບໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະຄວາມແปรປ່ວນແບບປະສົມສອງທາງ (ພາຍໃນລະຫວ່າງ) ດ້ວຍການທົດສອບ Bonferroni post hoc. n = 5 ຂອງແຕ່ລະເພດໃນແຕ່ລະກຸ່ມ.
ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ ແລະ creatine phosphate ໃນເລືອດແມ່ນທຽບເທົ່າກັນໃນໜູຄວບຄຸມ ແລະ ໜູທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaSH ຕະຫຼອດການສຶກສາ. ນອກຈາກນັ້ນ, ການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaSH ບໍ່ໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢູເຣຍ ແລະ creatinechrome ໃນເລືອດ (ຕາຕະລາງທີ 1).
ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດໃນເລືອດເບື້ອງຕົ້ນແມ່ນສາມາດປຽບທຽບກັນໄດ້ລະຫວ່າງໜູເພດຜູ້ທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS (8.1 ± 0.5 μM ທຽບກັບ 9.3 ± 0.2 μM) ແລະໜູເພດແມ່ (9.1 ± 1.0 μM ທຽບກັບ 6.1 ± 1.1 μM). ການໃຫ້ NaHS ເປັນເວລາ 14 ມື້ບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ລະດັບຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດໃນເລືອດໃນໜູເພດຜູ້ ຫຼື ເພດແມ່ (ຮູບທີ 4).
ການປ່ຽນແປງຂອງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດໃນເລືອດໃນໜູເພດຜູ້ ແລະ ເພດແມ່ຫຼັງຈາກການໃຫ້ NaHS (30 μM). ຂໍ້ມູນຖືກນຳສະເໜີເປັນຄ່າສະເລ່ຍ ± SEM ແລະ ໄດ້ຖືກປຽບທຽບໂດຍໃຊ້ການວິເຄາະສອງທາງປະສົມ (ພາຍໃນ-ພາຍໃນ) ຂອງຄວາມແปรປ່ວນກັບການທົດສອບ Bonferroni post hoc. ແຕ່ລະເພດ, n = 5/ກຸ່ມ.
ສະຫຼຸບຫຼັກຂອງການສຶກສາຄັ້ງນີ້ແມ່ນວ່ານ້ຳດື່ມທີ່ມີ NaHS ແມ່ນບໍ່ໝັ້ນຄົງ: ພຽງແຕ່ປະມານໜຶ່ງສ່ວນສີ່ຂອງປະລິມານຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດໃນເບື້ອງຕົ້ນເທົ່ານັ້ນທີ່ສາມາດກວດພົບໄດ້ 24 ຊົ່ວໂມງຫຼັງຈາກການເກັບຕົວຢ່າງຈາກປາຍ ແລະ ພາຍໃນຂວດນ້ຳໜູ/ໜູ. ນອກຈາກນັ້ນ, ໜູໄດ້ຮັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS ທີ່ບໍ່ໝັ້ນຄົງເນື່ອງຈາກການສູນເສຍ H2S ໃນສານລະລາຍ NaHS, ແລະ ການເພີ່ມ NaHS ໃສ່ນ້ຳດື່ມບໍ່ໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ນ້ຳໜັກຕົວ, ຢູເຣຍ ແລະ ຄຣີເອຕິນ ໂຄຣມຽມ, ຫຼື ຊູນໄຟດ໌ທັງໝົດໃນເລືອດ.
ໃນການສຶກສາຄັ້ງນີ້, ອັດຕາການສູນເສຍ H2S ຈາກສານລະລາຍ NaHS 30 μM ທີ່ກະກຽມໃນນ້ຳດື່ມແມ່ນປະມານ 3% ຕໍ່ຊົ່ວໂມງ. ໃນສານລະລາຍທີ່ມີບັຟເຟີ (ໂຊດຽມຊັນໄຟດ 100 μM ໃນ 10 mM PBS, pH 7.4), ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຊັນໄຟດໄດ້ຖືກລາຍງານວ່າຫຼຸດລົງ 7% ຕາມເວລາໃນໄລຍະເວລາ 8 ຊົ່ວໂມງ11. ກ່ອນໜ້ານີ້ພວກເຮົາໄດ້ປົກປ້ອງການໃຫ້ NaHS ທາງຊ່ອງທ້ອງໂດຍການລາຍງານວ່າອັດຕາການສູນເສຍຊັນໄຟດຈາກສານລະລາຍ NaHS 54 μM ໃນນ້ຳດື່ມແມ່ນປະມານ 2.3% ຕໍ່ຊົ່ວໂມງ (4%/ຊົ່ວໂມງໃນ 12 ຊົ່ວໂມງທຳອິດ ແລະ 1.4%/ຊົ່ວໂມງໃນ 12 ຊົ່ວໂມງສຸດທ້າຍຫຼັງຈາກການກະກຽມ)8. ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້43 ພົບວ່າການສູນເສຍ H2S ຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງຈາກສານລະລາຍ NaHS, ສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຍ້ອນການລະເຫີຍ ແລະ ການຜຸພັງ. ເຖິງແມ່ນວ່າບໍ່ມີການເພີ່ມຟອງ, ຊັນໄຟດໃນສານລະລາຍນ້ຳກ້ອນກໍ່ສູນເສຍຢ່າງໄວວາຍ້ອນການລະເຫີຍຂອງ H2S11. ການສຶກສາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າໃນລະຫວ່າງຂະບວນການລະລາຍ, ເຊິ່ງໃຊ້ເວລາປະມານ 30–60 ວິນາທີ, ປະມານ 5–10% ຂອງ H2S ຈະສູນເສຍໄປຍ້ອນການລະເຫີຍ6. ເພື່ອປ້ອງກັນການລະເຫີຍຂອງ H2S ຈາກສານລະລາຍ, ນັກຄົ້ນຄວ້າໄດ້ໃຊ້ມາດຕະການຫຼາຍຢ່າງ, ລວມທັງການຄົນສານລະລາຍຢ່າງອ່ອນໂຍນ12, ປົກຫຸ້ມສານລະລາຍດ້ວຍຟິມພາດສະຕິກ6, ແລະ ຫຼຸດຜ່ອນການສຳຜັດຂອງສານລະລາຍກັບອາກາດ, ເນື່ອງຈາກອັດຕາການລະເຫີຍຂອງ H2S ແມ່ນຂຶ້ນກັບການຕິດຕໍ່ລະຫວ່າງອາກາດກັບແຫຼວ.13 ການຜຸພັງຂອງ H2S ເກີດຂຶ້ນໂດຍທຳມະຊາດສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຍ້ອນໄອອອນໂລຫະປະສົມ, ໂດຍສະເພາະແມ່ນທາດເຫຼັກ ferric, ເຊິ່ງເປັນສິ່ງເຈືອປົນໃນນໍ້າ.13 ການຜຸພັງຂອງ H2S ເຮັດໃຫ້ເກີດການສ້າງ polysulfides (ອະຕອມຊູນຟູຣິກທີ່ເຊື່ອມຕໍ່ກັນດ້ວຍພັນທະໂຄວາເລນ)11. ເພື່ອຫຼີກເວັ້ນການຜຸພັງຂອງມັນ, ສານລະລາຍທີ່ມີ H2S ຈະຖືກກະກຽມໃນຕົວລະລາຍທີ່ບໍ່ມີອົກຊີເຈນ 44,45 ແລະຫຼັງຈາກນັ້ນຖືກລ້າງດ້ວຍອາກອນ ຫຼື ໄນໂຕຣເຈນເປັນເວລາ 20–30 ນາທີເພື່ອຮັບປະກັນການຂາດອົກຊີເຈນ.11,12,37,44,45,46 ກົດໄດເອທິລີນໄຕຣາມີນເພນຕາອາເຊຕິກ (DTPA) ເປັນຕົວຄີເລເຕີໂລຫະ (10–4 M) ທີ່ປ້ອງກັນການຜຸພັງ H2S ໃນສານລະລາຍແບບແອໂຣບິກ. ໃນເວລາທີ່ບໍ່ມີ DTPA, ອັດຕາການຜຸພັງຂອງ H2S ແມ່ນປະມານ 50% ໃນໄລຍະເວລາປະມານ 3 ຊົ່ວໂມງທີ່ 25°C37,47. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, ເນື່ອງຈາກການຜຸພັງຂອງ 1e-ຊູນໄຟດ໌ຖືກເລັ່ງໂດຍແສງອັນຕຣາໄວໂອເລັດ, ສານລະລາຍຄວນເກັບຮັກສາໄວ້ໃນນ້ຳກ້ອນ ແລະ ປ້ອງກັນຈາກແສງ11.
ດັ່ງທີ່ສະແດງຢູ່ໃນຮູບທີ 5, NaHS ຈະແຍກຕົວອອກເປັນ Na+ ແລະ HS-6 ເມື່ອລະລາຍໃນນໍ້າ; ການແຍກຕົວນີ້ຖືກກຳນົດໂດຍ pK1 ຂອງປະຕິກິລິຍາ, ເຊິ່ງຂຶ້ນກັບອຸນຫະພູມ: pK1 = 3.122 + 1132/T, ບ່ອນທີ່ T ມີຄ່າຕັ້ງແຕ່ 5 ຫາ 30°C ແລະ ວັດແທກເປັນອົງສາເຄລວິນ (K), K = °C + 273.1548. HS- ມີ pK2 ສູງ (pK2 = 19), ສະນັ້ນທີ່ pH < 96.49, S2- ຈະບໍ່ຖືກສ້າງຂຶ້ນ ຫຼື ເກີດຂຶ້ນໃນປະລິມານໜ້ອຍຫຼາຍ. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, HS- ເຮັດໜ້າທີ່ເປັນເບສ ແລະ ຮັບເອົາ H+ ຈາກໂມເລກຸນ H2O, ແລະ H2O ເຮັດໜ້າທີ່ເປັນກົດ ແລະ ປ່ຽນເປັນ H2S ແລະ OH-.
ການສ້າງອາຍແກັສ H2S ທີ່ລະລາຍໃນສານລະລາຍ NaHS (30 µM). aq, ສານລະລາຍນໍ້າ; g, ອາຍແກັສ; l, ແຫຼວ. ການຄິດໄລ່ທັງໝົດສົມມຸດວ່າ pH ຂອງນໍ້າ = 7.0 ແລະອຸນຫະພູມຂອງນໍ້າ = 20 °C. ສ້າງດ້ວຍ BioRender.com.
ເຖິງວ່າຈະມີຫຼັກຖານທີ່ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າສານລະລາຍ NaHS ບໍ່ໝັ້ນຄົງ, ການສຶກສາກ່ຽວກັບສັດຫຼາຍໆຄັ້ງໄດ້ໃຊ້ສານລະລາຍ NaHS ໃນນ້ຳດື່ມເປັນສານປະກອບໃຫ້ H2S15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26 ໂດຍມີໄລຍະເວລາແຊກແຊງຕັ້ງແຕ່ 1 ຫາ 21 ອາທິດ (ຕາຕະລາງທີ 2). ໃນລະຫວ່າງການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້, ສານລະລາຍ NaHS ໄດ້ຖືກປ່ຽນໃໝ່ທຸກໆ 12 ຊົ່ວໂມງ, 15, 17, 18, 24, 25 ຊົ່ວໂມງ ຫຼື 24 ຊົ່ວໂມງ, 19, 20, 21, 22, 23 ຊົ່ວໂມງ. ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າໜູໄດ້ຮັບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຢາທີ່ບໍ່ໝັ້ນຄົງເນື່ອງຈາກການສູນເສຍ H2S ຈາກສານລະລາຍ NaHS, ແລະປະລິມານ NaHS ໃນນ້ຳດື່ມຂອງໜູມີການປ່ຽນແປງຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນໄລຍະ 12 ຫຼື 24 ຊົ່ວໂມງ (ເບິ່ງຮູບທີ 2). ສອງໃນການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ລາຍງານວ່າລະດັບ H2S ໃນນໍ້າຍັງຄົງຄົງທີ່ໃນໄລຍະ 24 ຊົ່ວໂມງ ຫຼື ມີພຽງແຕ່ການສູນເສຍ H2S 2–3% ເທົ່ານັ້ນທີ່ສັງເກດເຫັນໃນໄລຍະ 12 ຊົ່ວໂມງ, ແຕ່ພວກມັນບໍ່ໄດ້ໃຫ້ຂໍ້ມູນສະໜັບສະໜູນ ຫຼື ລາຍລະອຽດການວັດແທກ. ສອງການສຶກສາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າເສັ້ນຜ່າສູນກາງຂະໜາດນ້ອຍຂອງຂວດນໍ້າສາມາດຫຼຸດຜ່ອນການລະເຫີຍ H2S ໄດ້15,19. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຜົນໄດ້ຮັບຂອງພວກເຮົາສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າສິ່ງນີ້ອາດຈະຊັກຊ້າການສູນເສຍ H2S ຈາກຂວດນໍ້າໄດ້ພຽງແຕ່ 2 ຊົ່ວໂມງແທນທີ່ຈະເປັນ 12–24 ຊົ່ວໂມງ. ທັງສອງການສຶກສາສັງເກດເຫັນວ່າພວກເຮົາສົມມຸດວ່າລະດັບ NaHS ໃນນໍ້າດື່ມບໍ່ປ່ຽນແປງເພາະວ່າພວກເຮົາບໍ່ໄດ້ສັງເກດເຫັນການປ່ຽນແປງສີໃນນໍ້າ; ດັ່ງນັ້ນ, ການຜຸພັງຂອງ H2S ໂດຍທາງອາກາດຈຶ່ງບໍ່ມີຄວາມໝາຍ19,20. ສິ່ງທີ່ໜ້າແປກໃຈແມ່ນວິທີການອັດຕະວິໄນນີ້ປະເມີນຄວາມໝັ້ນຄົງຂອງ NaHS ໃນນໍ້າແທນທີ່ຈະວັດແທກການປ່ຽນແປງຂອງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງມັນໃນໄລຍະເວລາ.
ການສູນເສຍ H2S ໃນສານລະລາຍ NaHS ແມ່ນກ່ຽວຂ້ອງກັບ pH ແລະອຸນຫະພູມ. ດັ່ງທີ່ໄດ້ລະບຸໄວ້ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາ, ການລະລາຍ NaHS ໃນນໍ້າຈະເຮັດໃຫ້ເກີດສານລະລາຍທີ່ເປັນດ່າງ50. ເມື່ອ NaHS ລະລາຍໃນນໍ້າ, ການສ້າງອາຍແກັສ H2S ທີ່ລະລາຍຈະຂຶ້ນກັບຄ່າ pH6. pH ຂອງສານລະລາຍທີ່ຕໍ່າລົງ, ສັດສ່ວນຂອງ NaHS ທີ່ມີຢູ່ໃນໂມເລກຸນອາຍແກັສ H2S ຈະຫຼາຍຂຶ້ນ ແລະ ການສູນເສຍຊູນໄຟດຈາກສານລະລາຍໃນນໍ້າກໍ່ຈະຫຼາຍຂຶ້ນ11. ບໍ່ມີການສຶກສາໃດໆທີ່ລາຍງານ pH ຂອງນໍ້າດື່ມທີ່ໃຊ້ເປັນຕົວລະລາຍສໍາລັບ NaHS. ອີງຕາມຄໍາແນະນໍາຂອງ WHO, ເຊິ່ງຖືກນໍາໃຊ້ໂດຍປະເທດສ່ວນໃຫຍ່, pH ຂອງນໍ້າດື່ມຄວນຢູ່ໃນລະດັບ 6.5–8.551. ໃນລະດັບ pH ນີ້, ອັດຕາການຜຸພັງໂດຍທໍາມະຊາດຂອງ H2S ຈະເພີ່ມຂຶ້ນປະມານສິບເທົ່າ13. ການລະລາຍ NaHS ໃນນໍ້າໃນລະດັບ pH ນີ້ຈະເຮັດໃຫ້ເກີດຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງອາຍແກັສ H2S ທີ່ລະລາຍຢູ່ທີ່ 1 ຫາ 22.5 μM, ເຊິ່ງເນັ້ນໜັກເຖິງຄວາມສໍາຄັນຂອງການຕິດຕາມ pH ຂອງນໍ້າກ່ອນທີ່ຈະລະລາຍ NaHS. ນອກຈາກນັ້ນ, ຊ່ວງອຸນຫະພູມທີ່ລາຍງານໃນການສຶກສາຂ້າງເທິງ (18–26 °C) ຈະສົ່ງຜົນໃຫ້ມີການປ່ຽນແປງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງອາຍແກັສ H2S ທີ່ລະລາຍໃນສານລະລາຍປະມານ 10%, ເນື່ອງຈາກການປ່ຽນແປງຂອງອຸນຫະພູມປ່ຽນແປງ pK1, ແລະການປ່ຽນແປງເລັກນ້ອຍໃນ pK1 ສາມາດມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງອາຍແກັສ H2S ທີ່ລະລາຍ48. ນອກຈາກນັ້ນ, ໄລຍະເວລາທີ່ຍາວນານຂອງການສຶກສາບາງຢ່າງ (5 ເດືອນ)22, ໃນລະຫວ່າງທີ່ຄາດວ່າຈະມີການປ່ຽນແປງຂອງອຸນຫະພູມຫຼາຍ, ຍັງເຮັດໃຫ້ບັນຫານີ້ຮ້າຍແຮງຂຶ້ນ.
ການສຶກສາທັງໝົດຍົກເວັ້ນ one21 ໄດ້ໃຊ້ສານລະລາຍ NaHS 30 μM ໃນນ້ຳດື່ມ. ເພື່ອອະທິບາຍປະລິມານທີ່ໃຊ້ (ເຊັ່ນ: 30 μM), ຜູ້ຂຽນບາງຄົນຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າ NaHS ໃນໄລຍະນ້ຳຜະລິດຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງອາຍແກັສ H2S ຄືກັນ ແລະ ຂອບເຂດທາງສະລີລະວິທະຍາຂອງ H2S ແມ່ນ 10 ຫາ 100 μM, ສະນັ້ນປະລິມານນີ້ແມ່ນຢູ່ພາຍໃນຂອບເຂດທາງສະລີລະວິທະຍາ15,16. ຄົນອື່ນໄດ້ອະທິບາຍວ່າ NaHS 30 μM ສາມາດຮັກສາລະດັບ H2S ໃນ plasma ໃຫ້ຢູ່ພາຍໃນຂອບເຂດທາງສະລີລະວິທະຍາ, ເຊັ່ນ: 5–300 μM19,20. ພວກເຮົາພິຈາລະນາຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS ໃນນ້ຳ 30 μM (pH = 7.0, T = 20 °C), ເຊິ່ງຖືກນໍາໃຊ້ໃນບາງການສຶກສາເພື່ອສຶກສາຜົນກະທົບຂອງ H2S. ພວກເຮົາສາມາດຄິດໄລ່ໄດ້ວ່າຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງອາຍແກັສ H2S ທີ່ລະລາຍແມ່ນ 14.7 μM, ເຊິ່ງປະມານ 50% ຂອງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ NaHS ເບື້ອງຕົ້ນ. ຄ່ານີ້ແມ່ນຄ້າຍຄືກັນກັບຄ່າທີ່ຄິດໄລ່ໂດຍຜູ້ຂຽນຄົນອື່ນພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂດຽວກັນ13,48.
ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາ, ການໃຫ້ NaHS ບໍ່ໄດ້ປ່ຽນແປງນ້ຳໜັກຕົວ; ຜົນໄດ້ຮັບນີ້ສອດຄ່ອງກັບຜົນໄດ້ຮັບຂອງການສຶກສາອື່ນໆໃນໜູເພດຜູ້22,23 ແລະໜູເພດຜູ້18; ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ສອງການສຶກສາໄດ້ລາຍງານວ່າ NaSH ໄດ້ຟື້ນຟູນ້ຳໜັກຕົວທີ່ຫຼຸດລົງໃນໜູທີ່ຖືກຕັດໝາກໄຂ່ຫຼັງອອກ24,26, ໃນຂະນະທີ່ການສຶກສາອື່ນໆບໍ່ໄດ້ລາຍງານຜົນກະທົບຂອງການໃຫ້ NaSH ຕໍ່ນ້ຳໜັກຕົວ15,16,17,19,20,21,25. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາ, ການໃຫ້ NaSH ບໍ່ໄດ້ມີຜົນກະທົບຕໍ່ລະດັບ urea ແລະ creatine chromium ໃນເລືອດ, ເຊິ່ງສອດຄ່ອງກັບຜົນໄດ້ຮັບຂອງບົດລາຍງານອື່ນ25.
ການສຶກສາພົບວ່າການເພີ່ມ NaHS ໃສ່ນ້ຳດື່ມເປັນເວລາ 2 ອາທິດບໍ່ໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຊູນໄຟດ໌ໃນເລືອດທັງໝົດໃນໜູເພດຜູ້ ແລະ ເພດແມ່. ການຄົ້ນພົບນີ້ສອດຄ່ອງກັບຜົນໄດ້ຮັບຂອງ Sen et al. (16): ການປິ່ນປົວ 8 ອາທິດດ້ວຍ NaHS 30 μM ໃນນ້ຳດື່ມບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ລະດັບຊູນໄຟດ໌ໃນ plasma ໃນໜູຄວບຄຸມ; ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ພວກເຂົາລາຍງານວ່າການແຊກແຊງນີ້ໄດ້ຟື້ນຟູລະດັບ H2S ທີ່ຫຼຸດລົງໃນ plasma ຂອງໜູທີ່ຖືກຕັດໝາກໄຂ່ຫຼັງອອກ. Li et al. (22) ຍັງໄດ້ລາຍງານວ່າການປິ່ນປົວດ້ວຍ NaHS 30 μM ໃນນ້ຳດື່ມເປັນເວລາ 5 ເດືອນເພີ່ມລະດັບຊູນໄຟດ໌ທີ່ບໍ່ມີໃນ plasma ໃນໜູທີ່ມີອາຍຸປະມານ 26%. ການສຶກສາອື່ນໆບໍ່ໄດ້ລາຍງານການປ່ຽນແປງຂອງຊູນໄຟດ໌ທີ່ໄຫຼວຽນຫຼັງຈາກການເພີ່ມ NaHS ໃສ່ນ້ຳດື່ມ.
ມີການສຶກສາເຈັດຄັ້ງທີ່ລາຍງານການໃຊ້ Sigma NaHS15,16,19,20,21,22,23 ແຕ່ບໍ່ໄດ້ໃຫ້ລາຍລະອຽດເພີ່ມເຕີມກ່ຽວກັບນ້ຳທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມຊື່ນ, ແລະ ມີການສຶກສາຫ້າຄັ້ງທີ່ບໍ່ໄດ້ກ່າວເຖິງແຫຼ່ງທີ່ມາຂອງ NaHS ທີ່ໃຊ້ໃນວິທີການກະກຽມຂອງເຂົາເຈົ້າ17,18,24,25,26. NaHS ເປັນໂມເລກຸນທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມຊື່ນ ແລະ ປະລິມານນ້ຳທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມຊື່ນຂອງມັນສາມາດແຕກຕ່າງກັນໄປ, ເຊິ່ງສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ປະລິມານ NaHS ທີ່ຕ້ອງການເພື່ອກະກຽມສານລະລາຍຂອງໂມລາຣິຕີທີ່ກຳນົດ. ຕົວຢ່າງ, ປະລິມານ NaHS ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາແມ່ນ NaHS•1.3 H2O. ດັ່ງນັ້ນ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS ຕົວຈິງໃນການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ອາດຈະຕໍ່າກວ່າທີ່ລາຍງານ.
"ສານປະກອບທີ່ມີອາຍຸສັ້ນແບບນີ້ສາມາດມີຜົນກະທົບທີ່ຍາວນານໄດ້ແນວໃດ?" Pozgay ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ21 ໄດ້ຖາມຄຳຖາມນີ້ເມື່ອປະເມີນຜົນກະທົບຂອງ NaHS ຕໍ່ພະຍາດລຳໄສ້ອັກເສບໃນໜູ. ພວກເຂົາຫວັງວ່າການສຶກສາໃນອະນາຄົດຈະສາມາດຕອບຄຳຖາມນີ້ ແລະ ຄາດຄະເນວ່າສານລະລາຍ NaHS ອາດຈະມີໂພລີຊູນໄຟດ໌ທີ່ໝັ້ນຄົງກວ່ານອກເໜືອໄປຈາກ H2S ແລະ ໄດຊູນໄຟດ໌ທີ່ເປັນຕົວກາງຂອງຜົນກະທົບຂອງ NaHS21. ຄວາມເປັນໄປໄດ້ອີກອັນໜຶ່ງແມ່ນວ່າຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຕ່ຳຫຼາຍຂອງ NaHS ທີ່ຍັງເຫຼືອຢູ່ໃນສານລະລາຍອາດຈະມີຜົນດີເຊັ່ນກັນ. ໃນຄວາມເປັນຈິງ, Olson ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານໄດ້ໃຫ້ຫຼັກຖານວ່າລະດັບໄມໂຄຣໂມລາຂອງ H2S ໃນເລືອດບໍ່ແມ່ນທາງສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຄວນຢູ່ໃນລະດັບນາໂນໂມລາ ຫຼື ບໍ່ມີເລີຍ13. H2S ອາດຈະເຮັດໜ້າທີ່ຜ່ານຊູນເຟດໂປຣຕີນ, ເຊິ່ງເປັນການດັດແປງຫຼັງການແປທີ່ສາມາດປີ້ນກັບໄດ້ເຊິ່ງສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ໜ້າທີ່, ຄວາມໝັ້ນຄົງ ແລະ ການຕັ້ງຢູ່ທີ່ຂອງໂປຣຕີນຫຼາຍຊະນິດ52,53,54. ໃນຄວາມເປັນຈິງ, ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂທາງສະລີລະວິທະຍາ, ປະມານ 10% ຫາ 25% ຂອງໂປຣຕີນຕັບຫຼາຍຊະນິດແມ່ນຊູນຟີເລດ53. ການສຶກສາທັງສອງຍອມຮັບການທຳລາຍຢ່າງໄວວາຂອງ NaHS19,23 ແຕ່ເປັນເລື່ອງແປກທີ່ລະບຸວ່າ "ພວກເຮົາຄວບຄຸມຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ NaHS ໃນນ້ຳດື່ມໂດຍການທົດແທນມັນທຸກໆມື້."23 ການສຶກສາໜຶ່ງໄດ້ລະບຸໂດຍບັງເອີນວ່າ "NaHS ແມ່ນຜູ້ໃຫ້ H2S ມາດຕະຖານ ແລະ ຖືກນໍາໃຊ້ທົ່ວໄປໃນການປະຕິບັດທາງດ້ານຄລີນິກເພື່ອທົດແທນ H2S ເອງ."18
ການສົນທະນາຂ້າງເທິງສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ NaHS ສູນເສຍໄປຈາກສານລະລາຍໂດຍຜ່ານການລະເຫີຍ, ການຜຸພັງ ແລະ ການແຍກດ້ວຍແສງ, ແລະ ດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງມີຄຳແນະນຳບາງຢ່າງເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນການສູນເສຍ H2S ຈາກສານລະລາຍ. ທຳອິດ, ການລະເຫີຍຂອງ H2S ແມ່ນຂຶ້ນກັບອິນເຕີເຟດລະຫວ່າງອາຍແກັສ ແລະ ແຫຼວ13 ແລະ pH ຂອງສານລະລາຍ11; ດັ່ງນັ້ນ, ເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນການສູນເສຍການລະເຫີຍ, ຄໍຂອງຂວດນໍ້າສາມາດເຮັດໄດ້ນ້ອຍທີ່ສຸດເທົ່າທີ່ຈະເປັນໄປໄດ້ຕາມທີ່ໄດ້ອະທິບາຍໄວ້ກ່ອນໜ້ານີ້15,19, ແລະ pH ຂອງນໍ້າສາມາດປັບໃຫ້ຢູ່ໃນຂອບເຂດສູງສຸດທີ່ຍອມຮັບໄດ້ (ເຊັ່ນ: 6.5–8.551) ເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນການສູນເສຍການລະເຫີຍ11. ອັນທີສອງ, ການຜຸພັງ H2S ທີ່ເກີດຂຶ້ນເອງຕາມທຳມະຊາດເກີດຂຶ້ນຍ້ອນຜົນກະທົບຂອງອົກຊີເຈນ ແລະ ການມີໄອອອນໂລຫະປະສົມໃນນໍ້າດື່ມ13, ສະນັ້ນການຫຼຸດອົກຊີເຈນຂອງນໍ້າດື່ມດ້ວຍອາກອນ ຫຼື ໄນໂຕຣເຈນ44,45 ແລະ ການໃຊ້ສານເຄມີໂລຫະ37,47 ສາມາດຫຼຸດຜ່ອນການຜຸພັງຂອງຊູນໄຟດ໌. ອັນທີສາມ, ເພື່ອປ້ອງກັນການເສື່ອມສະພາບດ້ວຍແສງຂອງ H2S, ຂວດນໍ້າສາມາດຫໍ່ດ້ວຍແຜ່ນອະລູມິນຽມຟອຍ; ການປະຕິບັດນີ້ຍັງໃຊ້ກັບວັດສະດຸທີ່ມີຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ແສງເຊັ່ນ: streptozotocin55. ສຸດທ້າຍ, ເກືອຊັນໄຟອະນົງຄະທາດ (NaHS, Na2S, ແລະ CaS) ສາມາດໃຫ້ຜ່ານທາງທໍ່ນໍ້າແທນທີ່ຈະລະລາຍໃນນໍ້າດື່ມຕາມທີ່ໄດ້ລາຍງານມາກ່ອນ56,57,58; ການສຶກສາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າໂຊດຽມຊັນໄຟທີ່ມີກໍາມັນຕະພາບລັງສີທີ່ໃຫ້ຜ່ານທາງທໍ່ນໍ້າໃຫ້ໜູຖືກດູດຊຶມໄດ້ດີ ແລະ ແຈກຢາຍໄປສູ່ເນື້ອເຍື່ອເກືອບທັງໝົດ59. ມາຮອດປະຈຸບັນ, ການສຶກສາສ່ວນໃຫຍ່ໄດ້ໃຫ້ເກືອຊັນໄຟອະນົງຄະທາດທາງຊ່ອງທ້ອງ; ​​ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ເສັ້ນທາງນີ້ບໍ່ຄ່ອຍຖືກນໍາໃຊ້ໃນສະຖານທີ່ທາງດ້ານການຊ່ວຍ60. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ເສັ້ນທາງທາງປາກແມ່ນເສັ້ນທາງການບໍລິຫານທີ່ພົບເລື້ອຍ ແລະ ມັກທີ່ສຸດໃນມະນຸດ61. ດັ່ງນັ້ນ, ພວກເຮົາແນະນໍາໃຫ້ປະເມີນຜົນກະທົບຂອງຜູ້ໃຫ້ H2S ໃນໜູໂດຍການໃຫ້ທາງປາກ.
ຂໍ້ຈຳກັດແມ່ນວ່າພວກເຮົາໄດ້ວັດແທກຊູນໄຟດ໌ໃນສານລະລາຍທີ່ເປັນນໍ້າ ແລະ ເຊຣັມໂດຍໃຊ້ວິທີ MB. ວິທີການວັດແທກຊູນໄຟດ໌ປະກອບມີການໄຕເຕຣດໄອໂອດິນ, ການວັດແສງສະເປກໂຕຣໂຟໂຕເມຕຣີ, ວິທີການເອເລັກໂຕຣເຄມີ (ໂພເທນຊິໂອເມຕຣີ, ແອມເປີໂຣເມຕຣີ, ວິທີການຄູໂລເມຕຣີ ແລະ ວິທີການແອມເປີໂຣເມຕຣີ) ແລະ ໂຄຣມາໂຕກຣາຟີ (ໂຄຣມາໂຕກຣາຟີແກັສ ແລະ ໂຄຣມາໂຕກຣາຟີແຫຼວປະສິດທິພາບສູງ), ເຊິ່ງໃນນັ້ນວິທີການທີ່ໃຊ້ທົ່ວໄປທີ່ສຸດແມ່ນວິທີການສະເປກໂຕຣໂຟໂຕເມຕຣີ MB62. ຂໍ້ຈຳກັດຂອງວິທີການ MB ສຳລັບການວັດແທກ H2S ໃນຕົວຢ່າງທາງຊີວະພາບແມ່ນວ່າມັນວັດແທກສານປະກອບທີ່ມີຊູນຟູຣ໌ທັງໝົດ ແລະ ບໍ່ແມ່ນ H2S ອິດສະຫຼະ63 ເພາະວ່າມັນຖືກປະຕິບັດພາຍໃຕ້ສະພາບທີ່ເປັນກົດ, ເຊິ່ງສົ່ງຜົນໃຫ້ການສະກັດຊູນຟູຣ໌ຈາກແຫຼ່ງທາງຊີວະພາບ64. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ອີງຕາມສະມາຄົມສາທາລະນະສຸກອາເມລິກາ, MB ແມ່ນວິທີການມາດຕະຖານສຳລັບການວັດແທກຊູນໄຟດ໌ໃນນໍ້າ65. ດັ່ງນັ້ນ, ຂໍ້ຈຳກັດນີ້ບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ຜົນໄດ້ຮັບຫຼັກຂອງພວກເຮົາກ່ຽວກັບຄວາມບໍ່ໝັ້ນຄົງຂອງສານລະລາຍທີ່ມີ NaHS. ຍິ່ງໄປກວ່ານັ້ນ, ໃນການສຶກສາຂອງພວກເຮົາ, ການຟື້ນຟູການວັດແທກຊູນໄຟດ໌ໃນຕົວຢ່າງນໍ້າ ແລະ ເຊຣັມທີ່ມີ NaHS ແມ່ນ 91% ແລະ 93% ຕາມລໍາດັບ. ຄ່າເຫຼົ່ານີ້ແມ່ນສອດຄ່ອງກັບຂອບເຂດທີ່ລາຍງານກ່ອນໜ້ານີ້ (77–92)66, ຊີ້ບອກເຖິງຄວາມແມ່ນຍໍາໃນການວິເຄາະທີ່ຍອມຮັບໄດ້42. ມັນເປັນສິ່ງທີ່ໜ້າສັງເກດວ່າພວກເຮົາໄດ້ໃຊ້ໜູທັງເພດຜູ້ ແລະ ເພດແມ່ຕາມຄໍາແນະນໍາຂອງສະຖາບັນສຸຂະພາບແຫ່ງຊາດ (NIH) ເພື່ອຫຼີກເວັ້ນການອີງໃສ່ການສຶກສາສັດເພດຜູ້ເທົ່ານັ້ນຫຼາຍເກີນໄປໃນການສຶກສາກ່ອນການທົດລອງທາງຄລີນິກ67 ແລະ ລວມທັງໜູທັງເພດຜູ້ ແລະ ເພດແມ່ທຸກຄັ້ງທີ່ເປັນໄປໄດ້68. ຈຸດນີ້ໄດ້ຖືກເນັ້ນໜັກໂດຍຄົນອື່ນ69,70,71.
ສະຫຼຸບແລ້ວ, ຜົນຂອງການສຶກສາຄັ້ງນີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າສານລະລາຍ NaHS ທີ່ຜະລິດຈາກນ້ຳດື່ມບໍ່ສາມາດນຳໃຊ້ເພື່ອສ້າງ H2S ໄດ້ເນື່ອງຈາກຄວາມບໍ່ໝັ້ນຄົງຂອງມັນ. ການໃຊ້ວິທີການນີ້ຈະເຮັດໃຫ້ສັດມີລະດັບ NaHS ທີ່ບໍ່ໝັ້ນຄົງ ແລະ ຕ່ຳກວ່າທີ່ຄາດໄວ້; ດັ່ງນັ້ນ, ການຄົ້ນພົບອາດຈະບໍ່ເໝາະສົມກັບມະນຸດ.
ຊຸດຂໍ້ມູນທີ່ນຳໃຊ້ ແລະ/ຫຼື ວິເຄາະໃນລະຫວ່າງການສຶກສາໃນປະຈຸບັນແມ່ນມີໃຫ້ຈາກຜູ້ຂຽນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຕາມການຮ້ອງຂໍທີ່ສົມເຫດສົມຜົນ.
Szabo, K. ເສັ້ນເວລາຂອງການຄົ້ນຄວ້າໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດ (H2S): ຈາກສານພິດສິ່ງແວດລ້ອມໄປສູ່ຕົວກາງທາງຊີວະພາບ. ຊີວະເຄມີ ແລະ ການຢາ 149, 5–19. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2017.09.010 (2018).
Abe, K. ແລະ Kimura, H. ບົດບາດທີ່ເປັນໄປໄດ້ຂອງໄຮໂດຣເຈນຊູນໄຟດ໌ໃນຖານະເປັນຕົວປັບສະພາບປະສາດພາຍໃນ. ວາລະສານວິທະຍາສາດປະສາດ, 16, 1066–1071. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.16-03-01066.1996 (1996).
Chirino, G., Szabo, C. ແລະ Papapetropoulos, A. ບົດບາດທາງສະລີລະວິທະຍາຂອງໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດໃນຈຸລັງ, ເນື້ອເຍື່ອ ແລະ ອະໄວຍະວະຂອງສັດລ້ຽງລູກດ້ວຍນົມແມ່. ການທົບທວນຄືນໃນວາລະສານສະລີລະວິທະຍາ ແລະ ຊີວະວິທະຍາໂມເລກຸນ 103, 31–276. https://doi.org/10.1152/physrev.00028.2021 (2023).
Dillon, KM, Carrazzone, RJ, Matson, JB, ແລະ Kashfi, K. ຄຳສັນຍາທີ່ພັດທະນາຂອງລະບົບການສົ່ງສານໃນຈຸລັງສຳລັບໄນຕຣິກອອກໄຊ ແລະ ໄຮໂດຣເຈນຊູນໄຟດ໌: ຍຸກໃໝ່ຂອງການແພດສ່ວນບຸກຄົນ. ຊີວະເຄມີ ແລະ ການຢາ 176, 113931. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2020.113931 (2020).
Sun, X., ແລະ ອື່ນໆ. ການໃຫ້ຢາ hydrogen sulfide ທີ່ປ່ອຍຕົວຊ້າໃນໄລຍະຍາວສາມາດປ້ອງກັນການບາດເຈັບຂອງກ້າມຊີ້ນຫົວໃຈຂາດເລືອດ/ການໄຫຼວຽນຂອງເລືອດຄືນໄດ້. ບົດລາຍງານວິທະຍາສາດ 7, 3541. https://doi.org/10.1038/s41598-017-03941-0 (2017).
Sitdikova, GF, Fuchs, R., Kainz, W., Weiger, TM ແລະ Hermann, A. ການຟອສຟໍຣິເລຊັນຂອງຊ່ອງທາງ BK ຄວບຄຸມຄວາມອ່ອນໄຫວຂອງໄຮໂດເຈນຊັນໄຟດ (H2S). Frontiers in Physiology 5, 431. https://doi.org/10.3389/fphys.2014.00431 (2014).
Sitdikova, GF, Weiger, TM ແລະ Hermann, A. ໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດ໌ຊ່ວຍເສີມສ້າງກິດຈະກຳຂອງຊ່ອງທາງໂພແທດຊຽມທີ່ກະຕຸ້ນດ້ວຍແຄວຊຽມ (BK) ໃນຈຸລັງເນື້ອງອກຕ່ອມໃຕ້ສະໝອງຂອງໜູ. Archit. Pfluegers. 459, 389–397. https://doi.org/10.1007/s00424-009-0737-0 (2010).
Jeddy, S., ແລະ ອື່ນໆ. ໄຮໂດຣເຈນຊັນໄຟດ໌ເສີມຂະຫຍາຍຜົນກະທົບປ້ອງກັນຂອງໄນໄຕຣຕ໌ຕໍ່ກັບການບາດເຈັບຂອງກ້າມຊີ້ນຫົວໃຈຂາດເລືອດ-ການໄຫຼວຽນຂອງເລືອດຄືນໃນໜູເບົາຫວານປະເພດ 2. Nitric Oxide 124, 15–23. https://doi.org/10.1016/j.niox.2022.04.004 (2022).
Corvino, A., ແລະ ອື່ນໆ. ທ່າອ່ຽງໃນເຄມີສາດຂອງຜູ້ໃຫ້ H2S ແລະ ຜົນກະທົບຂອງມັນຕໍ່ພະຍາດຫົວໃຈແລະຫຼອດເລືອດ. ສານຕ້ານອະນຸມູນອິດສະລະ 10, 429. https://doi.org/10.3390/antiox10030429 (2021).
DeLeon, ER, Stoy, GF, ແລະ Olson, KR (2012). ການສູນເສຍໄຮໂດຣເຈນຊູນໄຟດ໌ແບບ passive ໃນການທົດລອງທາງຊີວະວິທະຍາ. ຊີວະເຄມີວິເຄາະ 421, 203–207. https://doi.org/10.1016/j.ab.2011.10.016 (2012).
Nagy, P., ແລະ ອື່ນໆ. ລັກສະນະທາງເຄມີຂອງການວັດແທກໄຮໂດຣເຈນຊູນໄຟດ໌ໃນຕົວຢ່າງທາງສະລີລະວິທະຍາ. Biochimica et Biophysical Acta 1840, 876–891. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2013.05.037 (2014).
Kline, LL.D. ການກຳນົດດ້ວຍວິທີສະເປກໂຕຣໂຟໂຕເມຕຣິກຂອງໄຮໂດຣເຈນຊູນໄຟດ໌ໃນນ້ຳທຳມະຊາດ. Limnol. Oceanogr. 14, 454–458. https://doi.org/10.4319/lo.1969.14.3.0454 (1969).
Olson, KR (2012). ການຝຶກອົບຮົມຕົວຈິງໃນດ້ານເຄມີ ແລະ ຊີວະວິທະຍາຂອງໄຮໂດຣເຈນຊູນໄຟດ໌. “ສານຕ້ານອະນຸມູນອິດສະລະ.” ສັນຍານ Redox. 17, 32–44. https://doi.org/10.1089/ars.2011.4401 (2012).