ບົດຄວາມນີ້ແມ່ນສ່ວນໜຶ່ງຂອງຫົວຂໍ້ການຄົ້ນຄວ້າ “ການໃຊ້ຢາຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີ, ການຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີ ແລະ ຈຸລິນຊີຂອງສັດທີ່ເປັນອາຫານ”. ເບິ່ງບົດຄວາມທັງໝົດ 13 ບົດຄວາມ
ກົດອິນຊີຍັງຄົງເປັນທີ່ຕ້ອງການສູງເປັນສານເຕີມແຕ່ງໃສ່ອາຫານສັດ. ມາຮອດປະຈຸບັນ, ຈຸດສຸມແມ່ນຢູ່ທີ່ຄວາມປອດໄພຂອງອາຫານ, ໂດຍສະເພາະແມ່ນການຫຼຸດຜ່ອນອັດຕາການເກີດຂອງເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານໃນສັດປີກ ແລະ ສັດອື່ນໆ. ກົດອິນຊີຫຼາຍຊະນິດກຳລັງຢູ່ໃນການສຶກສາ ຫຼື ກຳລັງນຳໃຊ້ໃນການຄ້າຢູ່ແລ້ວ. ໃນບັນດາກົດອິນຊີຫຼາຍຊະນິດທີ່ໄດ້ຮັບການສຶກສາຢ່າງກວ້າງຂວາງ, ກົດຟໍມິກແມ່ນໜຶ່ງໃນນັ້ນ. ກົດຟໍມິກຖືກເພີ່ມເຂົ້າໃນອາຫານສັດປີກເພື່ອຈຳກັດການມີຢູ່ຂອງ Salmonella ແລະ ເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານອື່ນໆໃນອາຫານ ແລະ ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຫຼັງຈາກກິນ. ເມື່ອຄວາມເຂົ້າໃຈກ່ຽວກັບປະສິດທິພາບ ແລະ ຜົນກະທົບຂອງກົດຟໍມິກຕໍ່ເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານ ແລະ ເພີ່ມຂຶ້ນ, ມັນເປັນທີ່ຊັດເຈນວ່າການມີຢູ່ຂອງກົດຟໍມິກສາມາດກະຕຸ້ນເສັ້ນທາງສະເພາະໃນ Salmonella. ການຕອບສະໜອງນີ້ສາມາດກາຍເປັນສະລັບສັບຊ້ອນຫຼາຍຂຶ້ນເມື່ອກົດຟໍມິກເຂົ້າສູ່ລະບົບຍ່ອຍອາຫານ ແລະ ພົວພັນກັບບໍ່ພຽງແຕ່ Salmonella ທີ່ກຳລັງອາໄສຢູ່ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານແລ້ວເທົ່ານັ້ນ ແຕ່ຍັງພົວພັນກັບພືດຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ເອງ. ການທົບທວນຈະກວດສອບຜົນໄດ້ຮັບໃນປະຈຸບັນ ແລະ ຄວາມສົດໃສດ້ານສຳລັບການຄົ້ນຄວ້າຕື່ມອີກກ່ຽວກັບຈຸລິນຊີຂອງສັດປີກ ແລະ ອາຫານທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍກົດຟໍມິກ.
ໃນທັງການຜະລິດສັດລ້ຽງ ແລະ ສັດປີກ, ສິ່ງທ້າທາຍແມ່ນການພັດທະນາຍຸດທະສາດການຄຸ້ມຄອງທີ່ເພີ່ມປະສິດທິພາບການເຕີບໂຕ ແລະ ຜົນຜະລິດ ໃນຂະນະທີ່ຈຳກັດຄວາມສ່ຽງດ້ານຄວາມປອດໄພຂອງອາຫານ. ໃນອະດີດ, ການໃຫ້ຢາຕ້ານເຊື້ອໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນພາຍໃຕ້ການປິ່ນປົວໄດ້ປັບປຸງສຸຂະພາບ, ສະຫວັດດີການ ແລະ ຜົນຜະລິດຂອງສັດ (1–3). ຈາກທັດສະນະຂອງກົນໄກການອອກລິດ, ມີການສະເໜີວ່າຢາຕ້ານເຊື້ອທີ່ໃຫ້ໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນພາຍໃຕ້ການຍັບຍັ້ງຈະຊ່ວຍໄກ່ເກ່ຍການຕອບສະໜອງຂອງເຊື້ອພະຍາດໂດຍການປັບປ່ຽນພືດໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (GI) ແລະ ໃນທາງກັບກັນ, ການພົວພັນກັບເຊື້ອພະຍາດເຫຼົ່ານັ້ນ (3). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຄວາມກັງວົນຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງກ່ຽວກັບການແຜ່ລະບາດທີ່ອາດເກີດຂຶ້ນຂອງເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດເຊື້ອໃນອາຫານທີ່ຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອ ແລະ ການພົວພັນທີ່ອາດເກີດຂຶ້ນກັບການຕິດເຊື້ອທີ່ຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອໃນມະນຸດໄດ້ນຳໄປສູ່ການຖອນການໃຊ້ຢາຕ້ານເຊື້ອໃນສັດອາຫານເທື່ອລະກ້າວ (4–8). ດັ່ງນັ້ນ, ການພັດທະນາສານເຕີມແຕ່ງອາຫານສັດ ແລະ ສານປັບປຸງທີ່ຕອບສະໜອງຢ່າງໜ້ອຍບາງຄວາມຕ້ອງການເຫຼົ່ານີ້ (ປັບປຸງສຸຂະພາບສັດ, ສະຫວັດດີການ ແລະ ຜົນຜະລິດ) ແມ່ນມີຄວາມສົນໃຈຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຈາກທັງທັດສະນະຂອງການຄົ້ນຄວ້າທາງວິຊາການ ແລະ ການພັດທະນາທາງການຄ້າ (5, 9). ສານເຕີມແຕ່ງອາຫານສັດທາງການຄ້າຫຼາກຫຼາຍຊະນິດໄດ້ເຂົ້າສູ່ຕະຫຼາດອາຫານສັດ, ລວມທັງໂປຣໄບໂອຕິກ, ພຣີໄບໂອຕິກ, ນ້ຳມັນຫອມລະເຫີຍ ແລະ ສານປະກອບທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຈາກແຫຼ່ງພືດຕ່າງໆ, ແລະ ສານເຄມີເຊັ່ນ: ອັນດີໄຮ (10–14). ສານເສີມອາຫານສັດອື່ນໆທີ່ນິຍົມໃຊ້ໃນສັດປີກປະກອບມີ bacteriophages, zinc oxide, enzymes exogenous, ຜະລິດຕະພັນການຍົກເວັ້ນການແຂ່ງຂັນ, ແລະສານປະກອບທີ່ເປັນກົດ (15, 16).
ໃນບັນດາສານເຕີມແຕ່ງອາຫານສັດທາງເຄມີທີ່ມີຢູ່, ອັນເດຣດ ແລະ ກົດອິນຊີ ເປັນສານປະກອບທີ່ໄດ້ຮັບການສຶກສາ ແລະ ນຳໃຊ້ຢ່າງກວ້າງຂວາງທີ່ສຸດ (12, 17–21). ກົດອິນຊີ, ໂດຍສະເພາະກົດໄຂມັນຕ່ອງໂສ້ສັ້ນ (SCFAs), ແມ່ນຕົວຕ້ານເຊື້ອແບັກທີເຣັຍທີ່ເປັນພະຍາດທີ່ຮູ້ຈັກກັນດີ. ກົດອິນຊີເຫຼົ່ານີ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນສານເຕີມແຕ່ງອາຫານສັດບໍ່ພຽງແຕ່ເພື່ອຈໍາກັດການມີຢູ່ຂອງເຊື້ອພະຍາດໃນເນື້ອເຍື່ອອາຫານສັດເທົ່ານັ້ນ ແຕ່ຍັງມີຜົນກະທົບຢ່າງຫ້າວຫັນຕໍ່ການເຮັດວຽກຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (17, 20–24). ນອກຈາກນັ້ນ, SCFAs ແມ່ນຜະລິດໂດຍການໝັກໂດຍພືດໃນລຳໄສ້ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ ແລະ ເຊື່ອກັນວ່າມີບົດບາດກົນໄກໃນຄວາມສາມາດຂອງໂປຣໄບໂອຕິກ ແລະ ພຣີໄບໂອຕິກບາງຊະນິດໃນການຕ້ານເຊື້ອພະຍາດທີ່ກິນເຂົ້າໄປໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (21, 23, 25).
ໃນຫຼາຍປີທີ່ຜ່ານມາ, ກົດໄຂມັນຕ່ອງໂສ້ສັ້ນຫຼາຍຊະນິດ (SCFAs) ໄດ້ຮັບຄວາມສົນໃຈຫຼາຍເປັນສານເຕີມແຕ່ງອາຫານສັດ. ໂດຍສະເພາະ, ໂປຣພີໂອເນດ, ບິວທີເຣດ, ແລະ ຟໍແມັດ ໄດ້ເປັນຫົວຂໍ້ຂອງການສຶກສາ ແລະ ການນຳໃຊ້ທາງການຄ້າຈຳນວນຫຼາຍ (17, 20, 21, 23, 24, 26). ໃນຂະນະທີ່ການສຶກສາໃນຕອນຕົ້ນໄດ້ສຸມໃສ່ການຄວບຄຸມເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ຈາກອາຫານໃນອາຫານສັດ ແລະ ອາຫານສັດປີກ, ການສຶກສາທີ່ຜ່ານມາໄດ້ປ່ຽນຈຸດສຸມຂອງພວກເຂົາໄປສູ່ການປັບປຸງປະສິດທິພາບຂອງສັດ ແລະ ສຸຂະພາບຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານໂດຍລວມ (20, 21, 24). ອາເຊເຕດ, ໂປຣພີໂອເນດ, ແລະ ບິວທີເຣດ ໄດ້ຮັບຄວາມສົນໃຈຫຼາຍເປັນສານເຕີມແຕ່ງອາຫານກົດອິນຊີ, ໃນນັ້ນກົດຟໍມິກກໍ່ເປັນຕົວເລືອກທີ່ມີຄວາມຫວັງ (21, 23). ຄວາມສົນໃຈຫຼາຍໄດ້ສຸມໃສ່ດ້ານຄວາມປອດໄພຂອງອາຫານຂອງກົດຟໍມິກ, ໂດຍສະເພາະການຫຼຸດຜ່ອນອັດຕາການເກີດຂອງເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ຈາກອາຫານໃນອາຫານສັດລ້ຽງ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການນຳໃຊ້ທີ່ເປັນໄປໄດ້ອື່ນໆກໍ່ກຳລັງຖືກພິຈາລະນາ. ຈຸດປະສົງໂດຍລວມຂອງການທົບທວນນີ້ແມ່ນເພື່ອກວດສອບປະຫວັດ ແລະ ສະຖານະພາບປັດຈຸບັນຂອງກົດຟໍມິກເປັນສານປັບປຸງອາຫານສັດ (ຮູບທີ 1). ໃນການສຶກສານີ້, ພວກເຮົາຈະກວດສອບກົນໄກການຕ້ານເຊື້ອແບັກທີເຣຍຂອງກົດຟໍມິກ. ນອກຈາກນັ້ນ, ພວກເຮົາຈະພິຈາລະນາຢ່າງໃກ້ຊິດກ່ຽວກັບຜົນກະທົບຂອງມັນຕໍ່ສັດລ້ຽງ ແລະ ສັດປີກ ແລະ ປຶກສາຫາລືກ່ຽວກັບວິທີການທີ່ເປັນໄປໄດ້ເພື່ອປັບປຸງປະສິດທິພາບຂອງມັນ.
ຮູບທີ 1. ແຜນທີ່ຄວາມຄິດຂອງຫົວຂໍ້ທີ່ກວມເອົາໃນການທົບທວນນີ້. ໂດຍສະເພາະ, ຈຸດປະສົງທົ່ວໄປຕໍ່ໄປນີ້ແມ່ນສຸມໃສ່: ເພື່ອອະທິບາຍປະຫວັດຄວາມເປັນມາ ແລະ ສະຖານະພາບປັດຈຸບັນຂອງກົດຟໍມິກໃນຖານະເປັນສານປັບປຸງອາຫານສັດ, ກົນໄກການຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຂອງກົດຟໍມິກ ແລະ ຜົນກະທົບຂອງການນຳໃຊ້ຕໍ່ສຸຂະພາບສັດ ແລະ ສັດປີກ, ແລະ ວິທີການທີ່ມີທ່າແຮງເພື່ອປັບປຸງປະສິດທິພາບ.
ການຜະລິດອາຫານສັດສຳລັບສັດລ້ຽງ ແລະ ສັດປີກແມ່ນການດຳເນີນງານທີ່ສັບສົນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບຫຼາຍຂັ້ນຕອນ, ລວມທັງການປຸງແຕ່ງທາງກາຍະພາບຂອງເມັດພືດ (ເຊັ່ນ: ການບົດເພື່ອຫຼຸດຂະໜາດຂອງອະນຸພາກ), ການປຸງແຕ່ງດ້ວຍຄວາມຮ້ອນສຳລັບການປັ້ນເປັນເມັດ, ແລະ ການເພີ່ມສານອາຫານຫຼາຍຊະນິດໃສ່ໃນອາຫານໂດຍອີງຕາມຄວາມຕ້ອງການທາງໂພຊະນາການສະເພາະຂອງສັດ (27). ເນື່ອງຈາກຄວາມສັບສົນນີ້, ມັນບໍ່ແປກໃຈເລີຍທີ່ການປຸງແຕ່ງອາຫານສັດຈະເຮັດໃຫ້ເມັດພືດມີປັດໄຈສິ່ງແວດລ້ອມຫຼາຍຢ່າງກ່ອນທີ່ມັນຈະໄປຮອດໂຮງງານອາຫານສັດ, ໃນລະຫວ່າງການບົດ, ແລະ ຕໍ່ມາໃນລະຫວ່າງການຂົນສົ່ງ ແລະ ການໃຫ້ອາຫານໃນອາຫານປະສົມ (9, 21, 28). ດັ່ງນັ້ນ, ໃນໄລຍະຫຼາຍປີທີ່ຜ່ານມາ, ກຸ່ມຈຸລິນຊີທີ່ຫຼາກຫຼາຍໄດ້ຖືກລະບຸໃນອາຫານສັດ, ລວມທັງບໍ່ພຽງແຕ່ເຊື້ອແບັກທີເຣຍເທົ່ານັ້ນ ແຕ່ຍັງລວມທັງເຊື້ອແບັກທີເຣຍ, ເຊື້ອເຫັດ, ແລະ ເຊື້ອລາ (9, 21, 28–31). ສານປົນເປື້ອນເຫຼົ່ານີ້ບາງຊະນິດ, ເຊັ່ນເຊື້ອເຫັດບາງຊະນິດ, ສາມາດຜະລິດສານພິດຈາກເຊື້ອລາທີ່ເປັນອັນຕະລາຍຕໍ່ສຸຂະພາບຂອງສັດ (32–35).
ປະຊາກອນເຊື້ອແບັກທີເຣັຍສາມາດມີຄວາມຫຼາກຫຼາຍພໍສົມຄວນ ແລະ ຂຶ້ນກັບວິທີການທີ່ໃຊ້ສຳລັບການແຍກ ແລະ ການກຳນົດຈຸລິນຊີ ພ້ອມທັງແຫຼ່ງທີ່ມາຂອງຕົວຢ່າງໃນລະດັບໃດໜຶ່ງ. ຕົວຢ່າງ, ຮູບແບບສ່ວນປະກອບຂອງຈຸລິນຊີອາດແຕກຕ່າງກັນກ່ອນການປະຕິບັດຄວາມຮ້ອນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບການເປັນເມັດ (36). ເຖິງແມ່ນວ່າວິທີການປູກແບບຄລາສສິກ ແລະ ການວາງແຜ່ນໄດ້ໃຫ້ຂໍ້ມູນບາງຢ່າງ, ແຕ່ການນຳໃຊ້ວິທີການຈັດລຳດັບລຸ້ນຕໍ່ໄປ (NGS) ທີ່ອີງໃສ່ gene 16S rRNA ເມື່ອບໍ່ດົນມານີ້ໄດ້ໃຫ້ການປະເມີນທີ່ຄົບຖ້ວນກວ່າຂອງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີອາຫານສັດ (9). ເມື່ອ Solanki ແລະ ຄະນະ (37) ໄດ້ກວດກາຈຸລິນຊີຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣັຍຂອງເມັດເຂົ້າສາລີທີ່ເກັບໄວ້ເປັນໄລຍະເວລາໜຶ່ງໃນສະພາບທີ່ມີ phosphine, ເຊິ່ງເປັນຢາຂ້າແມງໄມ້, ພວກເຂົາພົບວ່າຈຸລິນຊີມີຄວາມຫຼາກຫຼາຍຫຼາຍຂຶ້ນຫຼັງຈາກການເກັບກ່ຽວ ແລະ ຫຼັງຈາກເກັບຮັກສາເປັນເວລາ 3 ເດືອນ. ນອກຈາກນັ້ນ, Solanki ແລະ ຄະນະ (37) (37) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ Proteobacteria, Firmicutes, Actinobacteria, Bacteroidetes, ແລະ Planctomyces ແມ່ນ phyla ທີ່ໂດດເດັ່ນໃນເມັດເຂົ້າສາລີ, Bacillus, Erwinia, ແລະ Pseudomonas ແມ່ນສະກຸນທີ່ໂດດເດັ່ນ, ແລະ Enterobacteriaceae ປະກອບເປັນສັດສ່ວນໜ້ອຍ. ໂດຍອີງໃສ່ການປຽບທຽບດ້ານການຈັດປະເພດ, ພວກເຂົາໄດ້ສະຫຼຸບວ່າການຂ້າເຊື້ອ phosphine ໄດ້ປ່ຽນແປງປະຊາກອນເຊື້ອແບັກທີເຣຍຢ່າງຫຼວງຫຼາຍແຕ່ບໍ່ມີຜົນກະທົບຕໍ່ຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງເຊື້ອລາ.
Solanki ແລະ ຄະນະ (37) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າແຫຼ່ງອາຫານຍັງສາມາດມີເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ຈາກອາຫານທີ່ສາມາດເຮັດໃຫ້ເກີດບັນຫາສຸຂະພາບຂອງປະຊາຊົນໂດຍອີງໃສ່ການກວດພົບເຊື້ອ Enterobacteriaceae ໃນຈຸລິນຊີ. ເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ຈາກອາຫານເຊັ່ນ: Clostridium perfringens, Clostridium botulinum, Salmonella, Campylobacter, Escherichia coli O157:H7, ແລະ Listeria monocytogenes ໄດ້ຖືກພົວພັນກັບອາຫານສັດ ແລະ ອາຫານໝັກສັດ (9, 31, 38). ການຢູ່ລອດຂອງເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ຈາກອາຫານອື່ນໆໃນອາຫານສັດ ແລະ ອາຫານສັດປີກຍັງບໍ່ທັນຮູ້ເທື່ອ. Ge ແລະ ຄະນະ (39) ໄດ້ກວດສອບສ່ວນປະກອບອາຫານສັດຫຼາຍກວ່າ 200 ຊະນິດ ແລະ ແຍກ Salmonella, E. coli, ແລະ Enterococci, ແຕ່ບໍ່ໄດ້ກວດພົບເຊື້ອ E. coli O157:H7 ຫຼື Campylobacter. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ເມຕຣິກເຊັ່ນ: ອາຫານແຫ້ງອາດຈະເປັນແຫຼ່ງຂອງເຊື້ອ E. coli ທີ່ຕິດຕໍ່ຈາກອາຫານສັດ. ໃນການຕິດຕາມແຫຼ່ງທີ່ມາຂອງການລະບາດຂອງກຸ່ມ Escherichia coli (STEC) ທີ່ຜະລິດສານພິດ Shiga ໃນປີ 2016 ທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບພະຍາດຂອງມະນຸດ, Crowe ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (40) ໄດ້ໃຊ້ການຈັດລຳດັບຈີໂນມທັງໝົດເພື່ອປຽບທຽບເຊື້ອແບັກທີເຣັຍທາງຄລີນິກກັບເຊື້ອແບັກທີເຣັຍທີ່ໄດ້ມາຈາກຜະລິດຕະພັນອາຫານ. ໂດຍອີງໃສ່ການປຽບທຽບນີ້, ພວກເຂົາໄດ້ສະຫຼຸບວ່າແຫຼ່ງທີ່ມາທີ່ໜ້າຈະເປັນແປ້ງສາລີດິບທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມຕ່ຳຈາກໂຮງສີແປ້ງ. ປະລິມານຄວາມຊຸ່ມຊື່ນຕ່ຳຂອງແປ້ງສາລີຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າ STEC ຍັງສາມາດຢູ່ລອດໄດ້ໃນອາຫານສັດທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມຕ່ຳ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ດັ່ງທີ່ Crowe ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (40) ໄດ້ກ່າວໄວ້, ການແຍກ STEC ຈາກຕົວຢ່າງແປ້ງແມ່ນຍາກ ແລະ ຕ້ອງການວິທີການແຍກພູມຕ້ານທານເພື່ອຟື້ນຟູຈຳນວນຈຸລັງແບັກທີເຣັຍທີ່ພຽງພໍ. ຂະບວນການວິນິດໄສທີ່ຄ້າຍຄືກັນນີ້ຍັງອາດຈະເຮັດໃຫ້ການກວດຫາ ແລະ ການແຍກເຊື້ອພະຍາດທີ່ຫາຍາກທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານໃນອາຫານສັດມີຄວາມສັບສົນ. ຄວາມຫຍຸ້ງຍາກໃນການກວດພົບອາດຈະເປັນຍ້ອນການຢູ່ລອດຂອງເຊື້ອພະຍາດເຫຼົ່ານີ້ໃນແມັດຕຣິກທີ່ມີຄວາມຊຸ່ມຕ່ຳເປັນເວລາດົນນານ. Forghani ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ. (41) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າແປ້ງສາລີທີ່ເກັບຮັກສາໄວ້ໃນອຸນຫະພູມຫ້ອງ ແລະ ສັກເຊື້ອດ້ວຍສ່ວນປະສົມຂອງກຸ່ມ Escherichia coli (EHEC) serogroups O45, O121, ແລະ O145 ທີ່ເປັນເຊື້ອແບັກທີເຣັຍໃນກະແສເລືອດ ແລະ Salmonella (S. Typhimurium, S. Agona, S. Enteritidis, ແລະ S. Anatum) ສາມາດວັດແທກໄດ້ໃນເວລາ 84 ແລະ 112 ມື້ ແລະ ຍັງສາມາດກວດພົບໄດ້ໃນເວລາ 24 ແລະ 52 ອາທິດ.
ໃນອະດີດ, Campylobacter ບໍ່ເຄີຍຖືກແຍກອອກຈາກອາຫານສັດ ແລະ ອາຫານສັດປີກໂດຍວິທີການເພາະເລี้ยงແບບດັ້ງເດີມ (38, 39), ເຖິງແມ່ນວ່າ Campylobacter ສາມາດແຍກອອກຈາກລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດປີກ ແລະ ຜະລິດຕະພັນສັດປີກໄດ້ຢ່າງງ່າຍດາຍ (42, 43). ເຖິງຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ອາຫານສັດຍັງມີຂໍ້ດີຂອງມັນໃນຖານະເປັນແຫຼ່ງທີ່ມີທ່າແຮງ. ຕົວຢ່າງ, Alves et al. (44) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການສັກເຊື້ອອາຫານໄກ່ທີ່ມີໄຂມັນດ້ວຍ C. jejuni ແລະ ການເກັບຮັກສາອາຫານຕໍ່ມາໃນສອງອຸນຫະພູມທີ່ແຕກຕ່າງກັນເປັນເວລາ 3 ຫຼື 5 ມື້ເຮັດໃຫ້ C. jejuni ທີ່ມີຊີວິດຢູ່ໄດ້ກັບຄືນມາ ແລະ ໃນບາງກໍລະນີ, ແມ່ນແຕ່ການແຜ່ພັນຂອງມັນ. ພວກເຂົາໄດ້ສະຫຼຸບວ່າ C. jejuni ສາມາດຢູ່ລອດໄດ້ຢ່າງແນ່ນອນໃນອາຫານສັດປີກ ແລະ ດັ່ງນັ້ນ, ອາດເປັນແຫຼ່ງທີ່ມີທ່າແຮງຂອງການຕິດເຊື້ອສຳລັບໄກ່.
ການປົນເປື້ອນຂອງເຊື້ອ Salmonella ໃນອາຫານສັດ ແລະ ສັດປີກໄດ້ຮັບຄວາມສົນໃຈຫຼາຍໃນອະດີດ ແລະ ຍັງຄົງເປັນຈຸດສຸມຂອງຄວາມພະຍາຍາມຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງເພື່ອພັດທະນາວິທີການກວດຫາທີ່ນຳໃຊ້ໄດ້ກັບອາຫານສັດໂດຍສະເພາະ ແລະ ເພື່ອຊອກຫາມາດຕະການຄວບຄຸມທີ່ມີປະສິດທິພາບຫຼາຍຂຶ້ນ (12, 26, 30, 45–53). ໃນໄລຍະຫຼາຍປີທີ່ຜ່ານມາ, ການສຶກສາຫຼາຍໆຄັ້ງໄດ້ກວດສອບການແຍກ ແລະ ລັກສະນະຂອງເຊື້ອ Salmonella ໃນສະຖານທີ່ຜະລິດອາຫານສັດ ແລະ ໂຮງງານອາຫານສັດຕ່າງໆ (38, 39, 54–61). ໂດຍລວມແລ້ວ, ການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າເຊື້ອ Salmonella ສາມາດແຍກໄດ້ຈາກສ່ວນປະກອບອາຫານສັດ, ແຫຼ່ງອາຫານສັດ, ປະເພດອາຫານສັດ, ແລະ ການຜະລິດອາຫານສັດຫຼາກຫຼາຍຊະນິດ. ອັດຕາການຕິດເຊື້ອ ແລະ serotypes ຂອງເຊື້ອ Salmonella ທີ່ໂດດເດັ່ນທີ່ແຍກອອກມາກໍ່ແຕກຕ່າງກັນ. ຕົວຢ່າງ, Li et al. (57) ໄດ້ຢືນຢັນການມີເຊື້ອ Salmonella spp. ມັນຖືກກວດພົບໃນ 12.5% ​​ຂອງ 2058 ຕົວຢ່າງທີ່ເກັບມາຈາກອາຫານສັດທີ່ສົມບູນ, ສ່ວນປະກອບອາຫານສັດ, ອາຫານສັດລ້ຽງ, ອາຫານສັດລ້ຽງ, ແລະ ອາຫານເສີມສັດລ້ຽງໃນຊ່ວງເວລາເກັບກຳຂໍ້ມູນປີ 2002 ຫາ 2009. ນອກຈາກນັ້ນ, ເຊໂຣໄທບທີ່ພົບເລື້ອຍທີ່ສຸດທີ່ກວດພົບໃນຕົວຢ່າງ Salmonella 12.5% ​​ທີ່ກວດພົບວ່າມີເຊື້ອ Salmonella ແມ່ນ S. Senftenberg ແລະ S. Montevideo (57). ໃນການສຶກສາກ່ຽວກັບອາຫານທີ່ກຽມພ້ອມກິນ ແລະ ຜະລິດຕະພັນອາຫານສັດໃນລັດເທັກຊັສ, Hsieh ແລະ ຄະນະ (58) ໄດ້ລາຍງານວ່າ ອັດຕາການແຜ່ລະບາດສູງສຸດຂອງເຊື້ອ Salmonella ແມ່ນຢູ່ໃນປາປົ່ນ, ຕາມດ້ວຍໂປຣຕີນສັດ, ໂດຍມີ S. Mbanka ແລະ S. Montevideo ເປັນເຊໂຣໄທບທີ່ພົບເລື້ອຍທີ່ສຸດ. ໂຮງສີອາຫານສັດຍັງມີຈຸດທີ່ອາດເກີດການປົນເປື້ອນຂອງອາຫານສັດຫຼາຍຈຸດໃນລະຫວ່າງການປະສົມ ແລະ ການເພີ່ມສ່ວນປະກອບ (9, 56, 61). Magossi ແລະ ຄະນະ (61) ສາມາດສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າຈຸດປົນເປື້ອນຫຼາຍຈຸດສາມາດເກີດຂຶ້ນໄດ້ໃນລະຫວ່າງການຜະລິດອາຫານສັດໃນສະຫະລັດ. ໃນຄວາມເປັນຈິງ, Magossi ແລະ ຄະນະ (61) ໄດ້ພົບເຫັນຢ່າງໜ້ອຍໜຶ່ງເຊື້ອ Salmonella ໃນ 11 ໂຮງສີອາຫານສັດ (ທັງໝົດ 12 ສະຖານທີ່ເກັບຕົວຢ່າງ) ໃນແປດລັດໃນສະຫະລັດ. ເນື່ອງຈາກມີທ່າແຮງທີ່ຈະມີການປົນເປື້ອນຂອງເຊື້ອ Salmonella ໃນລະຫວ່າງການຈັດການອາຫານສັດ, ການຂົນສົ່ງ, ແລະ ການໃຫ້ອາຫານປະຈໍາວັນ, ມັນບໍ່ແປກໃຈເລີຍທີ່ມີຄວາມພະຍາຍາມຢ່າງຫຼວງຫຼາຍໃນການພັດທະນາສານເຕີມແຕ່ງອາຫານທີ່ສາມາດຫຼຸດຜ່ອນ ແລະ ຮັກສາລະດັບການປົນເປື້ອນຂອງຈຸລິນຊີໃຫ້ຕໍ່າຕະຫຼອດວົງຈອນການຜະລິດສັດ.
ມີຄວາມຮູ້ໜ້ອຍກ່ຽວກັບກົນໄກການຕອບສະໜອງສະເພາະຂອງ Salmonella ຕໍ່ກົດ formic. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, Huang ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (62) ໄດ້ຊີ້ບອກວ່າກົດ formic ມີຢູ່ໃນລຳໄສ້ນ້ອຍຂອງສັດລ້ຽງລູກດ້ວຍນົມ ແລະ Salmonella spp. ສາມາດຜະລິດກົດ formic ໄດ້. Huang ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (62) ໄດ້ໃຊ້ຊຸດຂອງການກາຍພັນລຶບຂອງເສັ້ນທາງທີ່ສຳຄັນເພື່ອກວດຫາການສະແດງອອກຂອງເຊື້ອ Salmonella virulence ແລະພົບວ່າ formate ສາມາດເຮັດໜ້າທີ່ເປັນສັນຍານທີ່ແຜ່ກະຈາຍເພື່ອກະຕຸ້ນ Salmonella ໃຫ້ບຸກລຸກຈຸລັງ epithelial Hep-2. ເມື່ອບໍ່ດົນມານີ້, Liu ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (63) ໄດ້ແຍກຕົວຂົນສົ່ງ formate, FocA, ຈາກ Salmonella typhimurium ທີ່ເຮັດໜ້າທີ່ເປັນຊ່ອງທາງ formate ສະເພາະທີ່ pH 7.0 ແຕ່ຍັງສາມາດເຮັດໜ້າທີ່ເປັນຊ່ອງທາງສົ່ງອອກ passive ທີ່ pH ພາຍນອກສູງ ຫຼື ເປັນຊ່ອງທາງນຳເຂົ້າ formate/hydrogen ion ທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວທີສອງທີ່ pH ຕ່ຳ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການສຶກສານີ້ໄດ້ດຳເນີນຢູ່ໃນ serotype ດຽວຂອງ S. Typhimurium. ຄຳຖາມຍັງຄົງຢູ່ວ່າ serotypes ທັງໝົດຕອບສະໜອງຕໍ່ກົດ formic ໂດຍກົນໄກທີ່ຄ້າຍຄືກັນ. ນີ້ຍັງຄົງເປັນຄຳຖາມການຄົ້ນຄວ້າທີ່ສຳຄັນທີ່ຄວນໄດ້ຮັບການແກ້ໄຂໃນການສຶກສາໃນອະນາຄົດ. ບໍ່ວ່າຜົນໄດ້ຮັບຈະເປັນແນວໃດກໍຕາມ, ມັນຍັງມີຄວາມສະຫຼາດທີ່ຈະໃຊ້ຫຼາຍຊະນິດຂອງເຊື້ອ Salmonella ຫຼືແມ່ນແຕ່ຫຼາຍສາຍພັນຂອງແຕ່ລະຊະນິດໃນການທົດລອງການກວດຄັດກອງເມື່ອພັດທະນາຄຳແນະນຳທົ່ວໄປສຳລັບການໃຊ້ອາຫານເສີມທີ່ເປັນກົດເພື່ອຫຼຸດລະດັບເຊື້ອ Salmonella ໃນອາຫານສັດ. ວິທີການໃໝ່ໆ, ເຊັ່ນ: ການໃຊ້ບາໂຄດທາງພັນທຸກໍາເພື່ອເຂົ້າລະຫັດສາຍພັນເພື່ອຈໍາແນກກຸ່ມຍ່ອຍທີ່ແຕກຕ່າງກັນຂອງຊະນິດດຽວກັນ (9, 64), ສະເໜີໂອກາດທີ່ຈະແຍກແຍະຄວາມແຕກຕ່າງທີ່ລະອຽດກວ່າທີ່ອາດຈະສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ການສະຫຼຸບ ແລະ ການຕີຄວາມຄວາມແຕກຕ່າງ.
ລັກສະນະທາງເຄມີ ແລະ ຮູບແບບການແຍກຕົວຂອງຟໍແມັດກໍ່ອາດຈະມີຄວາມສຳຄັນເຊັ່ນກັນ. ໃນຊຸດການສຶກສາ, Beyer ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (65–67) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການຍັບຍັ້ງ Enterococcus faecium, Campylobacter jejuni, ແລະ Campylobacter coli ແມ່ນມີຄວາມສຳພັນກັບປະລິມານຂອງກົດຟໍມິກທີ່ແຍກຕົວ ແລະ ບໍ່ຂຶ້ນກັບ pH ຫຼື ກົດຟໍມິກທີ່ບໍ່ແຍກຕົວ. ຮູບແບບທາງເຄມີຂອງຟໍແມັດທີ່ເຊື້ອແບັກທີເຣັຍສຳຜັດກໍ່ເບິ່ງຄືວ່າມີຄວາມສຳຄັນເຊັ່ນກັນ. Kovanda ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (68) ໄດ້ກວດສອບສິ່ງມີຊີວິດຫຼາຍຊະນິດທີ່ເປັນກຣາມລົບ ແລະ ກຣາມບວກ ແລະ ປຽບທຽບຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງການຍັບຍັ້ງຂັ້ນຕ່ຳ (MICs) ຂອງໂຊດຽມຟໍແມັດ (500–25,000 ມກ/ລ) ແລະ ສ່ວນປະສົມຂອງໂຊດຽມຟໍແມັດ ແລະ ຟໍແມັດອິດສະຫຼະ (40/60 m/v; 10–10,000 ມກ/ລ). ອີງຕາມຄ່າ MIC, ພວກເຂົາພົບວ່າ sodium formate ສາມາດຍັບຍັ້ງໄດ້ພຽງແຕ່ຕໍ່ກັບ Campylobacter jejuni, Clostridium perfringens, Streptococcus suis, ແລະ Streptococcus pneumoniae, ແຕ່ບໍ່ແມ່ນຕໍ່ກັບ Escherichia coli, Salmonella typhimurium, ຫຼື Enterococcus faecalis. ໃນທາງກົງກັນຂ້າມ, ສ່ວນປະສົມຂອງ sodium formate ແລະ sodium formate ອິດສະຫຼະສາມາດຍັບຍັ້ງໄດ້ຕໍ່ກັບສິ່ງມີຊີວິດທັງໝົດ, ເຮັດໃຫ້ຜູ້ຂຽນສະຫຼຸບໄດ້ວ່າກົດ formic ອິດສະຫຼະມີຄຸນສົມບັດຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີສ່ວນໃຫຍ່. ມັນຈະເປັນສິ່ງທີ່ໜ້າສົນໃຈທີ່ຈະກວດສອບອັດຕາສ່ວນທີ່ແຕກຕ່າງກັນຂອງສອງຮູບແບບເຄມີເຫຼົ່ານີ້ເພື່ອກຳນົດວ່າລະດັບຂອງຄ່າ MIC ມີຄວາມກ່ຽວຂ້ອງກັບລະດັບຂອງກົດ formic ທີ່ມີຢູ່ໃນສູດປະສົມ ແລະ ການຕອບສະໜອງຕໍ່ກົດ formic 100% ຫຼືບໍ່.
Gomez-Garcia ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (69) ໄດ້ທົດສອບການປະສົມປະສານຂອງນ້ຳມັນຫອມລະເຫີຍ ແລະ ກົດອິນຊີ (ເຊັ່ນ: ກົດຟໍມິກ) ຕໍ່ກັບເຊື້ອ Escherichia coli, Salmonella, ແລະ Clostridium perfringens ຫຼາຍຊະນິດທີ່ໄດ້ມາຈາກໝູ. ພວກເຂົາໄດ້ທົດສອບປະສິດທິພາບຂອງກົດອິນຊີຫົກຊະນິດ, ລວມທັງກົດຟໍມິກ, ແລະ ນ້ຳມັນຫອມລະເຫີຍຫົກຊະນິດຕໍ່ກັບເຊື້ອໝູ, ໂດຍໃຊ້ຟໍມິລດີໄຮດ໌ເປັນຕົວຄວບຄຸມໃນທາງບວກ. Gomez-García ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (69) ໄດ້ກຳນົດ MIC50, MBC50, ແລະ MIC50/MBC50 ຂອງກົດຟໍມິກຕໍ່ກັບ Escherichia coli (600 ແລະ 2400 ppm, 4), Salmonella (600 ແລະ 2400 ppm, 4), ແລະ Clostridium perfringens (1200 ແລະ 2400 ppm, 2), ໃນນັ້ນພົບວ່າກົດຟໍມິກມີປະສິດທິພາບຫຼາຍກ່ວາກົດອິນຊີທັງໝົດຕໍ່ກັບ E. coli ແລະ Salmonella. (69) ກົດຟໍມິກມີປະສິດທິພາບຕໍ່ກັບ Escherichia coli ແລະ Salmonella ເນື່ອງຈາກຂະໜາດໂມເລກຸນທີ່ນ້ອຍ ແລະ ລະບົບຕ່ອງໂສ້ຍາວຂອງມັນ (70).
Beyer ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານໄດ້ກວດກາເຊື້ອ Campylobacter ທີ່ແຍກອອກມາຈາກໝູ (66) ແລະ ເຊື້ອ Campylobacter jejuni ທີ່ແຍກອອກມາຈາກສັດປີກ (67) ແລະ ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າກົດຟໍມິກແຍກຕົວຢູ່ໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນທີ່ສອດຄ່ອງກັບການຕອບສະໜອງ MIC ທີ່ວັດແທກສຳລັບກົດອິນຊີອື່ນໆ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຂອງກົດເຫຼົ່ານີ້, ລວມທັງກົດຟໍມິກ, ໄດ້ຖືກຕັ້ງຄຳຖາມເພາະວ່າ Campylobacter ສາມາດໃຊ້ກົດເຫຼົ່ານີ້ເປັນສານຕັ້ງຕົ້ນ (66, 67). ການນຳໃຊ້ກົດຂອງ C. jejuni ບໍ່ແມ່ນເລື່ອງແປກໃຈເພາະມັນໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າມີການເຜົາຜານທີ່ບໍ່ແມ່ນ glycolytic. ດັ່ງນັ້ນ, C. jejuni ມີຄວາມສາມາດໃນການເຜົາຜານຄາໂບໄຮເດຣດທີ່ຈຳກັດ ແລະ ອີງໃສ່ gluconeogenesis ຈາກກົດອະມິໂນ ແລະ ກົດອິນຊີສຳລັບການເຜົາຜານພະລັງງານ ແລະ ກິດຈະກຳສັງເຄາະທາງຊີວະພາບສ່ວນໃຫຍ່ (71, 72). ການສຶກສາໃນຕອນຕົ້ນໂດຍ Line ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (73) ໄດ້ໃຊ້ແຖວ phenotypic ທີ່ມີແຫຼ່ງຄາບອນ 190 ແຫຼ່ງ ແລະ ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ C. jejuni 11168(GS) ສາມາດໃຊ້ກົດອິນຊີເປັນແຫຼ່ງຄາບອນ, ເຊິ່ງສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນຕົວກາງຂອງວົງຈອນກົດ tricarboxylic. ການສຶກສາຕື່ມອີກໂດຍ Wagli ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ. (74) ໂດຍການໃຊ້ອາເຣການນຳໃຊ້ຄາບອນແບບ phenotypic ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າເຊື້ອ C. jejuni ແລະ E. coli ທີ່ໄດ້ກວດສອບໃນການສຶກສາຂອງພວກມັນສາມາດເຕີບໃຫຍ່ໄດ້ໃນກົດອິນຊີເປັນແຫຼ່ງຄາບອນ. Formate ເປັນຜູ້ໃຫ້ເອເລັກຕຣອນຫຼັກສຳລັບການເຜົາຜານພະລັງງານທາງເດີນຫາຍໃຈຂອງ C. jejuni ແລະດັ່ງນັ້ນ, ແຫຼ່ງພະລັງງານຫຼັກສຳລັບ C. jejuni (71, 75). C. jejuni ສາມາດໃຊ້ format ເປັນຜູ້ໃຫ້ໄຮໂດຣເຈນຜ່ານສະລັບສັບຊ້ອນ formate dehydrogenase ທີ່ຜູກມັດກັບເຍື່ອຫຸ້ມເຊລທີ່ຜຸພັງ format ເປັນຄາບອນໄດອອກໄຊ, ໂປຣຕອນ, ແລະເອເລັກຕຣອນ ແລະເຮັດໜ້າທີ່ເປັນຜູ້ໃຫ້ເອເລັກຕຣອນສຳລັບການຫາຍໃຈ (72).
ກົດຟໍມິກມີປະຫວັດການນຳໃຊ້ມາດົນນານເປັນສານປັບປຸງອາຫານຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີ, ແຕ່ແມງໄມ້ບາງຊະນິດຍັງສາມາດຜະລິດກົດຟໍມິກເພື່ອໃຊ້ເປັນສານເຄມີປ້ອງກັນເຊື້ອຈຸລິນຊີ. Rossini ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (76) ໄດ້ແນະນຳວ່າກົດຟໍມິກອາດເປັນສ່ວນປະກອບຂອງນ້ຳສົ້ມຂອງມົດທີ່ Ray (77) ໄດ້ອະທິບາຍເກືອບ 350 ປີກ່ອນ. ນັບຕັ້ງແຕ່ນັ້ນມາ, ຄວາມເຂົ້າໃຈຂອງພວກເຮົາກ່ຽວກັບການຜະລິດກົດຟໍມິກໃນມົດ ແລະ ແມງໄມ້ອື່ນໆໄດ້ເພີ່ມຂຶ້ນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ, ແລະ ປະຈຸບັນເປັນທີ່ຮູ້ຈັກວ່າຂະບວນການນີ້ແມ່ນສ່ວນໜຶ່ງຂອງລະບົບປ້ອງກັນສານພິດທີ່ສັບສົນໃນແມງໄມ້ (78). ກຸ່ມແມງໄມ້ຕ່າງໆ, ລວມທັງເຜິ້ງບໍ່ມີຕຸ່ມ, ມົດແຫຼມ (Hymenoptera: Apidae), ແມງກະເບື້ອດິນ (Galerita lecontei ແລະ G. janus), ມົດບໍ່ມີຕຸ່ມ (Formicinae), ແລະ ຕົວອ່ອນແມງເມົາບາງຊະນິດ (Lepidoptera: Myrmecophaga), ເປັນທີ່ຮູ້ຈັກວ່າຜະລິດກົດຟໍມິກເປັນສານເຄມີປ້ອງກັນ (76, 78–82).
ມົດອາດຈະມີລັກສະນະດີທີ່ສຸດເພາະວ່າພວກມັນມີ acidocytes, ເຊິ່ງເປັນຊ່ອງເປີດພິເສດທີ່ຊ່ວຍໃຫ້ພວກມັນສີດພິດທີ່ປະກອບດ້ວຍກົດຟໍມິກເປັນຫຼັກ (82). ມົດໃຊ້ serine ເປັນຕົວຕັ້ງຕົ້ນ ແລະ ເກັບຮັກສາ format ຈຳນວນຫຼວງຫຼາຍໄວ້ໃນຕ່ອມພິດຂອງພວກມັນ, ເຊິ່ງມີຄວາມອົບອຸ່ນພຽງພໍເພື່ອປົກປ້ອງມົດເຈົ້າພາບຈາກຄວາມເປັນພິດຂອງ format ຈົນກວ່າມັນຈະຖືກສີດ (78, 83). ກົດຟໍມິກທີ່ພວກມັນປ່ອຍອອກມາອາດຈະ (1) ເປັນຟີໂຣໂມນເຕືອນເພື່ອດຶງດູດມົດໂຕອື່ນໆ; (2) ເປັນສານເຄມີປ້ອງກັນຕົວຈາກຄູ່ແຂ່ງ ແລະ ຜູ້ລ້າ; ແລະ (3) ເຮັດໜ້າທີ່ເປັນຕົວແທນຕ້ານເຊື້ອລາ ແລະ ຕ້ານເຊື້ອແບັກທີເຣຍເມື່ອລວມກັບຢາງເປັນສ່ວນໜຶ່ງຂອງວັດສະດຸຮັງ (78, 82, 84–88). ກົດຟໍມິກທີ່ຜະລິດໂດຍມົດມີຄຸນສົມບັດຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີ, ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າມັນສາມາດຖືກນໍາໃຊ້ເປັນສານເຕີມແຕ່ງທາພາຍນອກໄດ້. ສິ່ງນີ້ໄດ້ຖືກສາທິດໂດຍ Bruch et al. (88), ຜູ້ທີ່ໄດ້ເພີ່ມກົດຟໍມິກສັງເຄາະໃສ່ຢາງ ແລະ ປັບປຸງກິດຈະກໍາຕ້ານເຊື້ອລາຢ່າງຫຼວງຫຼາຍ. ຫຼັກຖານເພີ່ມເຕີມກ່ຽວກັບປະສິດທິພາບຂອງກົດຟໍມິກ ແລະ ປະໂຫຍດທາງຊີວະພາບຂອງມັນແມ່ນວ່າ ຕົວກິນມົດຍັກໃຫຍ່ ເຊິ່ງບໍ່ສາມາດຜະລິດກົດໃນກະເພາະອາຫານໄດ້ ຈະກິນມົດທີ່ມີກົດຟໍມິກ ເພື່ອໃຫ້ຕົວເອງໄດ້ຮັບກົດຟໍມິກເຂັ້ມຂຸ້ນ ເປັນກົດຍ່ອຍອາຫານທາງເລືອກ (89).
ການນໍາໃຊ້ກົດຟໍມິກໃນພາກປະຕິບັດຕົວຈິງໃນກະສິກໍາໄດ້ຮັບການພິຈາລະນາ ແລະ ສຶກສາມາເປັນເວລາຫຼາຍປີ. ໂດຍສະເພາະ, ກົດຟໍມິກສາມາດໃຊ້ເປັນສານເສີມໃນອາຫານສັດ ແລະ ຫຍ້າໝັກ. ໂຊດຽມຟໍມິກທັງໃນຮູບແບບແຂງ ແລະ ແຫຼວຖືວ່າປອດໄພສໍາລັບສັດທຸກຊະນິດ, ຜູ້ບໍລິໂພກ ແລະ ສິ່ງແວດລ້ອມ (90). ອີງຕາມການປະເມີນຂອງເຂົາເຈົ້າ (90), ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສູງສຸດ 10,000 ມກ ກົດຟໍມິກທຽບເທົ່າ/ກິໂລອາຫານຖືວ່າປອດໄພສໍາລັບສັດທຸກຊະນິດ, ໃນຂະນະທີ່ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສູງສຸດ 12,000 ມກ ກົດຟໍມິກທຽບເທົ່າ/ກິໂລອາຫານຖືວ່າປອດໄພສໍາລັບໝູ. ການໃຊ້ກົດຟໍມິກເປັນສານປັບປຸງອາຫານສັດໄດ້ຖືກສຶກສາມາເປັນເວລາຫຼາຍປີ. ມັນຖືກພິຈາລະນາວ່າມີມູນຄ່າທາງການຄ້າເປັນສານກັນບູດຫຍ້າໝັກ ແລະ ເປັນສານຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີໃນອາຫານສັດ ແລະ ສັດປີກ.
ສານເຕີມແຕ່ງທາງເຄມີເຊັ່ນ: ກົດແມ່ນອົງປະກອບສຳຄັນໃນການຜະລິດຫຍ້າລ້ຽງສັດ ແລະ ການຄຸ້ມຄອງອາຫານສັດ (91, 92). Borreani ແລະ ຄະນະ (91) ໄດ້ສັງເກດເຫັນວ່າ ເພື່ອໃຫ້ບັນລຸການຜະລິດຫຍ້າລ້ຽງສັດທີ່ມີຄຸນນະພາບສູງ, ມັນຈຳເປັນຕ້ອງຮັກສາຄຸນນະພາບຂອງອາຫານສັດ ໃນຂະນະທີ່ຮັກສາວັດຖຸແຫ້ງໃຫ້ຫຼາຍເທົ່າທີ່ຈະຫຼາຍໄດ້. ຜົນຂອງການເພີ່ມປະສິດທິພາບດັ່ງກ່າວແມ່ນການຫຼຸດຜ່ອນການສູນເສຍໃນທຸກຂັ້ນຕອນຂອງຂະບວນການລ້ຽງສັດ: ຕັ້ງແຕ່ສະພາບການເຄື່ອນໄຫວທາງອາກາດໃນເບື້ອງຕົ້ນໃນ silo ຈົນເຖິງການໝັກ, ການເກັບຮັກສາ ແລະ ການເປີດ silo ຄືນໃໝ່ສຳລັບການໃຫ້ອາຫານສັດ. ວິທີການສະເພາະສຳລັບການເພີ່ມປະສິດທິພາບການຜະລິດຫຍ້າລ້ຽງສັດໃນທົ່ງນາ ແລະ ການໝັກຫຍ້າລ້ຽງສັດຕໍ່ມາໄດ້ຖືກປຶກສາຫາລືຢ່າງລະອຽດຢູ່ບ່ອນອື່ນ (91, 93-95) ແລະ ຈະບໍ່ໄດ້ປຶກສາຫາລືຢ່າງລະອຽດຢູ່ທີ່ນີ້. ບັນຫາຫຼັກແມ່ນການເສື່ອມສະພາບຂອງອົກຊີເດຊັນທີ່ເກີດຈາກເຊື້ອລາ ແລະ ເຊື້ອລາ ເມື່ອມີອົກຊີເຈນຢູ່ໃນຫຍ້າລ້ຽງສັດ (91, 92). ດັ່ງນັ້ນ, ການສັກຢາຊີວະພາບ ແລະ ສານເຕີມແຕ່ງທາງເຄມີໄດ້ຖືກນຳສະເໜີເພື່ອຕ້ານກັບຜົນກະທົບທີ່ບໍ່ດີຂອງການເນົ່າເປື່ອຍ (91, 92). ການພິຈາລະນາອື່ນໆສຳລັບສານເຕີມແຕ່ງໃນຫຍ້າຫຍາບປະກອບມີການຈຳກັດການແຜ່ກະຈາຍຂອງເຊື້ອພະຍາດທີ່ອາດຈະມີຢູ່ໃນຫຍ້າຫຍາບ (ເຊັ່ນ: ເຊື້ອພະຍາດ E. coli, Listeria, ແລະ Salmonella) ເຊັ່ນດຽວກັນກັບເຊື້ອເຫັດທີ່ຜະລິດສານພິດຈາກເຊື້ອລາ (96–98).
Mack ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (92) ໄດ້ແບ່ງສານເຕີມແຕ່ງທີ່ເປັນກົດອອກເປັນສອງປະເພດ. ກົດເຊັ່ນ: ໂປຣປິໂອນິກ, ອາຊີຕິກ, ຊໍບິກ, ແລະ ເບນໂຊອິກ ຮັກສາສະຖຽນລະພາບທາງອາກາດຂອງຫຍ້າໝັກເມື່ອໃຫ້ສັດກິນໂດຍການຈຳກັດການເຕີບໂຕຂອງເຊື້ອລາ ແລະ ເຊື້ອລາ (92). Mack ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (92) ໄດ້ແຍກກົດຟໍມິກອອກຈາກກົດອື່ນໆ ແລະ ຖືວ່າມັນເປັນຕົວເພີ່ມຄວາມກົດໂດຍກົງທີ່ຍັບຍັ້ງການເນົ່າເປື່ອຍຂອງເຊື້ອລາ ແລະ ຈຸລິນຊີທີ່ເນົ່າເປື່ອຍ ໃນຂະນະທີ່ຮັກສາຄວາມສົມບູນຂອງໂປຣຕີນໝັກ. ໃນທາງປະຕິບັດ, ຮູບແບບເກືອຂອງມັນແມ່ນຮູບແບບເຄມີທີ່ພົບເລື້ອຍທີ່ສຸດເພື່ອຫຼີກລ່ຽງຄຸນສົມບັດການກັດກ່ອນຂອງກົດໃນຮູບແບບທີ່ບໍ່ແມ່ນເກືອ (91). ກຸ່ມຄົ້ນຄວ້າຫຼາຍກຸ່ມຍັງໄດ້ສຶກສາກົດຟໍມິກເປັນສານເຕີມແຕ່ງທີ່ເປັນກົດສຳລັບຫຍ້າໝັກ. ກົດຟໍມິກເປັນທີ່ຮູ້ຈັກສຳລັບຄວາມສາມາດໃນການເຮັດໃຫ້ເປັນກົດຢ່າງໄວວາ ແລະ ຜົນກະທົບຍັບຍັ້ງຂອງມັນຕໍ່ການເຕີບໂຕຂອງຈຸລິນຊີທີ່ເປັນອັນຕະລາຍ ເຊິ່ງຫຼຸດຜ່ອນປະລິມານໂປຣຕີນ ແລະ ຄາໂບໄຮເດຣດທີ່ລະລາຍໃນນ້ຳຂອງຫຍ້າໝັກ (99). ດັ່ງນັ້ນ, He ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (92) ໄດ້ປຽບທຽບກົດຟໍມິກກັບສານເຕີມແຕ່ງທີ່ເປັນກົດໃນຫຍ້າໝັກ. (100) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າກົດຟໍມິກສາມາດຍັບຍັ້ງ Escherichia coli ແລະ ຫຼຸດ pH ຂອງຫຍ້າໝັກ. ເຊື້ອແບັກທີເຣຍທີ່ຜະລິດກົດຟໍມິກ ແລະ ກົດແລັກຕິກກໍ່ໄດ້ຖືກເພີ່ມເຂົ້າໃນຫຍ້າຫຍາບເພື່ອກະຕຸ້ນການເປັນກົດ ແລະ ການຜະລິດກົດອິນຊີ (101). ໃນຄວາມເປັນຈິງ, Cooley ແລະ ທີມງານ (101) ພົບວ່າເມື່ອຫຍ້າຫຍາບຖືກເຮັດໃຫ້ເປັນກົດດ້ວຍກົດຟໍມິກ 3% (w/v), ການຜະລິດກົດແລັກຕິກ ແລະ ກົດຟໍມິກເກີນກົດອິນຊີ 800 ແລະ 1000 ມກ/ຕົວຢ່າງ 100 ກຣາມ, ຕາມລຳດັບ. Mack ແລະ ທີມງານ (92) ໄດ້ທົບທວນຄືນເອກະສານຄົ້ນຄວ້າກ່ຽວກັບສານເຕີມແຕ່ງຫຍ້າຫຍາບຢ່າງລະອຽດ, ລວມທັງການສຶກສາທີ່ຈັດພິມຕັ້ງແຕ່ປີ 2000 ທີ່ສຸມໃສ່ ແລະ/ຫຼື ລວມເອົາກົດຟໍມິກ ແລະ ກົດອື່ນໆ. ດັ່ງນັ້ນ, ການທົບທວນນີ້ຈະບໍ່ສົນທະນາກ່ຽວກັບການສຶກສາສ່ວນບຸກຄົນຢ່າງລະອຽດ ແຕ່ຈະສະຫຼຸບຈຸດສຳຄັນບາງຢ່າງກ່ຽວກັບປະສິດທິພາບຂອງກົດຟໍມິກເປັນສານເຕີມແຕ່ງຫຍ້າຫຍາບທາງເຄມີ. ທັງກົດຟໍມິກທີ່ບໍ່ມີສານເຕີມແຕ່ງ ແລະ ບໍ່ມີສານເຕີມແຕ່ງໄດ້ຖືກສຶກສາແລ້ວ ແລະ ໃນກໍລະນີຫຼາຍທີ່ສຸດ Clostridium spp. ກິດຈະກຳທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຂອງມັນ (ຄາໂບໄຮເດຣດ, ໂປຣຕີນ, ແລະ ການດູດຊຶມ lactate ແລະ ການຂັບຖ່າຍ butyrate) ມີແນວໂນ້ມທີ່ຈະຫຼຸດລົງ, ໃນຂະນະທີ່ການຜະລິດແອມໂມເນຍ ແລະ butyrate ຫຼຸດລົງ ແລະ ການຮັກສາສານແຫ້ງເພີ່ມຂຶ້ນ (92). ມີຂໍ້ຈຳກັດຕໍ່ປະສິດທິພາບຂອງກົດຟໍມິກ, ແຕ່ການນຳໃຊ້ມັນເປັນສານເຕີມແຕ່ງສຳລັບເຮັດຫຍ້າປະສົມກັບກົດອື່ນໆເບິ່ງຄືວ່າຈະເອົາຊະນະບັນຫາເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ບາງຢ່າງ (92).
ກົດຟໍມິກສາມາດຍັບຍັ້ງເຊື້ອແບັກທີເຣັຍທີ່ເປັນພະຍາດທີ່ມີຄວາມສ່ຽງຕໍ່ສຸຂະພາບຂອງມະນຸດ. ຕົວຢ່າງ, Pauly ແລະ Tam (102) ໄດ້ສັກເຊື້ອເຊື້ອ L. monocytogenes ທີ່ມີລະດັບວັດຖຸແຫ້ງທີ່ແຕກຕ່າງກັນສາມລະດັບ (200, 430, ແລະ 540 g/kg) ຂອງຫຍ້າໄຣ ແລະ ຫຼັງຈາກນັ້ນໄດ້ເສີມດ້ວຍກົດຟໍມິກ (3 ml/kg) ຫຼື ເຊື້ອແບັກທີເຣັຍກົດແລັກຕິກ (8 × 105/g) ແລະ ເອນໄຊມ໌ເຊວລູໂລຕິກ. ພວກເຂົາເຈົ້າໄດ້ລາຍງານວ່າການປິ່ນປົວທັງສອງວິທີໄດ້ຫຼຸດຜ່ອນ L. monocytogenes ໃຫ້ຢູ່ໃນລະດັບທີ່ບໍ່ສາມາດກວດພົບໄດ້ໃນຫຍ້າໝັກທີ່ມີວັດຖຸແຫ້ງຕ່ຳ (200 g/kg). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ໃນຫຍ້າໝັກທີ່ມີວັດຖຸແຫ້ງປານກາງ (430 g/kg), L. monocytogenes ຍັງສາມາດກວດພົບໄດ້ຫຼັງຈາກ 30 ມື້ໃນຫຍ້າໝັກທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍກົດຟໍມິກ. ການຫຼຸດລົງຂອງ L. monocytogenes ເບິ່ງຄືວ່າຈະກ່ຽວຂ້ອງກັບ pH ຕ່ຳ, ກົດແລັກຕິກ, ແລະ ກົດທີ່ບໍ່ໄດ້ແຍກອອກລວມ. ຕົວຢ່າງ, Pauly ແລະ Tam (102) ໄດ້ສັງເກດເຫັນວ່າລະດັບກົດ lactic ແລະລະດັບກົດ undissociated ທີ່ມີຄວາມສຳຄັນເປັນພິເສດ, ເຊິ່ງອາດເປັນເຫດຜົນທີ່ວ່າບໍ່ມີການຫຼຸດລົງຂອງ L. monocytogenes ໃນສື່ທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວດ້ວຍກົດ formic ຈາກຫຍ້າໝັກທີ່ມີເນື້ອໃນຂອງວັດຖຸແຫ້ງສູງກວ່າ. ການສຶກສາທີ່ຄ້າຍຄືກັນນີ້ຄວນຈະດຳເນີນໃນອະນາຄົດສຳລັບເຊື້ອພະຍາດໝັກທົ່ວໄປອື່ນໆເຊັ່ນ Salmonella ແລະເຊື້ອພະຍາດ E. coli. ການວິເຄາະລຳດັບ 16S rDNA ທີ່ສົມບູນແບບກວ່າຂອງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໝັກທັງໝົດອາດຈະຊ່ວຍໃຫ້ລະບຸການປ່ຽນແປງໃນປະຊາກອນຈຸລິນຊີໝັກໂດຍລວມທີ່ເກີດຂຶ້ນໃນໄລຍະຕ່າງໆຂອງການໝັກຫຍ້າໝັກໃນສະພາບທີ່ມີກົດ formic (103). ການໄດ້ຮັບຂໍ້ມູນ microbiome ອາດຈະໃຫ້ການສະໜັບສະໜູນດ້ານການວິເຄາະເພື່ອຄາດຄະເນຄວາມຄືບໜ້າຂອງການໝັກຫຍ້າໝັກໄດ້ດີຂຶ້ນ ແລະເພື່ອພັດທະນາການປະສົມປະສານສານເຕີມແຕ່ງທີ່ດີທີ່ສຸດເພື່ອຮັກສາຄຸນນະພາບຂອງຫຍ້າໝັກໃຫ້ສູງ.
ໃນອາຫານສັດທີ່ເຮັດຈາກເມັດພືດ, ກົດຟໍມິກຖືກນໍາໃຊ້ເປັນຕົວແທນຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີເພື່ອຈໍາກັດລະດັບເຊື້ອພະຍາດໃນອາຫານສັດທີ່ໄດ້ມາຈາກເມັດພືດຕ່າງໆ ເຊັ່ນດຽວກັນກັບສ່ວນປະກອບອາຫານສັດບາງຢ່າງເຊັ່ນ: ຜະລິດຕະພັນຈາກສັດ. ຜົນກະທົບຕໍ່ປະຊາກອນເຊື້ອພະຍາດໃນສັດປີກ ແລະ ສັດອື່ນໆສາມາດແບ່ງອອກເປັນສອງປະເພດຄື: ຜົນກະທົບໂດຍກົງຕໍ່ປະຊາກອນເຊື້ອພະຍາດຂອງອາຫານສັດເອງ ແລະ ຜົນກະທົບທາງອ້ອມຕໍ່ເຊື້ອພະຍາດທີ່ອາໄສຢູ່ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດຫຼັງຈາກກິນອາຫານທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວ (20, 21, 104). ແນ່ນອນ, ສອງປະເພດນີ້ແມ່ນກ່ຽວຂ້ອງກັນ, ຍ້ອນວ່າການຫຼຸດລົງຂອງເຊື້ອພະຍາດໃນອາຫານຄວນຈະສົ່ງຜົນໃຫ້ການຫຼຸດລົງຂອງການເປັນອານານິຄົມເມື່ອສັດກິນອາຫານ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຄຸນສົມບັດຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຂອງກົດສະເພາະທີ່ເພີ່ມເຂົ້າໃນຕາຕະລາງອາຫານສາມາດໄດ້ຮັບອິດທິພົນຈາກຫຼາຍປັດໃຈ, ເຊັ່ນ: ສ່ວນປະກອບຂອງອາຫານ ແລະ ຮູບແບບທີ່ກົດຖືກເພີ່ມ (21, 105).
ໃນອະດີດ, ການນຳໃຊ້ກົດຟໍມິກ ແລະ ກົດທີ່ກ່ຽວຂ້ອງອື່ນໆ ໄດ້ສຸມໃສ່ການຄວບຄຸມໂດຍກົງຂອງເຊື້ອ Salmonella ໃນອາຫານສັດ ແລະ ສັດປີກ (21). ຜົນໄດ້ຮັບຂອງການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ໄດ້ຖືກສະຫຼຸບຢ່າງລະອຽດໃນການທົບທວນຫຼາຍໆຄັ້ງທີ່ເຜີຍແຜ່ໃນເວລາທີ່ແຕກຕ່າງກັນ (18, 21, 26, 47, 104–106), ສະນັ້ນມີພຽງແຕ່ການຄົ້ນພົບທີ່ສຳຄັນບາງຢ່າງຈາກການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ເທົ່ານັ້ນທີ່ຖືກປຶກສາຫາລືໃນການທົບທວນນີ້. ການສຶກສາຫຼາຍໆຄັ້ງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າກິດຈະກຳຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຂອງກົດຟໍມິກໃນອາຫານສັດແມ່ນຂຶ້ນກັບປະລິມານ ແລະ ເວລາຂອງການສຳຜັດກັບກົດຟໍມິກ, ຄວາມຊຸ່ມຊື່ນຂອງອາຫານສັດ, ແລະ ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣຍໃນອາຫານ ແລະ ລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດ (19, 21, 107–109). ປະເພດຂອງອາຫານສັດ ແລະ ແຫຼ່ງທີ່ມາຂອງສ່ວນປະກອບອາຫານສັດກໍ່ເປັນປັດໄຈທີ່ມີອິດທິພົນເຊັ່ນກັນ. ດັ່ງນັ້ນ, ການສຶກສາຈຳນວນໜຶ່ງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າລະດັບຂອງເຊື້ອ Salmonella ສານພິດຈາກເຊື້ອແບັກທີເຣຍທີ່ແຍກອອກມາຈາກຜະລິດຕະພັນຮ່ວມຂອງສັດອາດຈະແຕກຕ່າງຈາກທີ່ແຍກອອກມາຈາກຜະລິດຕະພັນຮ່ວມຂອງພືດ (39, 45, 58, 59, 110–112). ເຖິງຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ຄວາມແຕກຕ່າງໃນການຕອບສະໜອງຕໍ່ກົດເຊັ່ນ: ກົດຟໍມິກອາດຈະກ່ຽວຂ້ອງກັບຄວາມແຕກຕ່າງໃນການຢູ່ລອດຂອງເຊໂຣວາໃນອາຫານ ແລະ ອຸນຫະພູມທີ່ອາຫານຖືກປຸງແຕ່ງ (19, 113, 114). ຄວາມແຕກຕ່າງໃນການຕອບສະໜອງຂອງເຊໂຣວາຕໍ່ການປິ່ນປົວດ້ວຍກົດອາດເປັນປັດໄຈໜຶ່ງໃນການປົນເປື້ອນອາຫານສັດປີກທີ່ປົນເປື້ອນ (113, 115), ແລະ ຄວາມແຕກຕ່າງໃນການສະແດງອອກຂອງເຊື້ອພະຍາດ (116) ກໍ່ອາດມີບົດບາດເຊັ່ນກັນ. ຄວາມແຕກຕ່າງໃນການທົນທານຕໍ່ກົດອາດຈະສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ການກວດຫາເຊື້ອ Salmonella ໃນສື່ການເພາະເລี้ยงຖ້າກົດທີ່ມາຈາກອາຫານບໍ່ໄດ້ຮັບການບັຟເຟີຢ່າງພຽງພໍ (21, 105, 117–122). ຮູບແບບທາງກາຍະພາບຂອງອາຫານ (ໃນແງ່ຂອງຂະໜາດຂອງອະນຸພາກ) ອາດມີອິດທິພົນຕໍ່ຄວາມພ້ອມຂອງກົດຟໍມິກໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (123).
ຍຸດທະສາດເພື່ອເພີ່ມປະສິດທິພາບກິດຈະກຳຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຂອງກົດຟໍມິກທີ່ເພີ່ມເຂົ້າໃນອາຫານສັດກໍ່ມີຄວາມສຳຄັນເຊັ່ນກັນ. ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດທີ່ສູງຂຶ້ນໄດ້ຖືກແນະນຳສຳລັບສ່ວນປະກອບອາຫານທີ່ມີການປົນເປື້ອນສູງກ່ອນການປະສົມອາຫານສັດເພື່ອຫຼຸດຜ່ອນຄວາມເສຍຫາຍທີ່ອາດເກີດຂຶ້ນກັບອຸປະກອນໂຮງງານອາຫານສັດ ແລະ ບັນຫາກ່ຽວກັບຄວາມແຊບຂອງອາຫານສັດ (105). Jones (51) ໄດ້ສະຫຼຸບວ່າ Salmonella ທີ່ມີຢູ່ໃນອາຫານສັດກ່ອນການທຳຄວາມສະອາດດ້ວຍສານເຄມີແມ່ນຍາກທີ່ຈະຄວບຄຸມກ່ວາ Salmonella ທີ່ສຳຜັດກັບອາຫານສັດຫຼັງຈາກການປິ່ນປົວດ້ວຍສານເຄມີ. ການປະຕິບັດຄວາມຮ້ອນຂອງອາຫານໃນລະຫວ່າງການປຸງແຕ່ງຢູ່ໂຮງງານອາຫານສັດໄດ້ຖືກແນະນຳເປັນການແຊກແຊງເພື່ອຈຳກັດການປົນເປື້ອນຂອງ Salmonella ໃນອາຫານສັດ, ແຕ່ສິ່ງນີ້ຂຶ້ນກັບສ່ວນປະກອບຂອງອາຫານ, ຂະໜາດຂອງອະນຸພາກ, ແລະປັດໄຈອື່ນໆທີ່ກ່ຽວຂ້ອງກັບຂະບວນການບົດ (51). ກິດຈະກຳຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຂອງກົດຍັງຂຶ້ນກັບອຸນຫະພູມ, ແລະອຸນຫະພູມທີ່ເພີ່ມຂຶ້ນໃນການມີກົດອິນຊີອາດຈະມີຜົນກະທົບຕໍ່ການຍັບຍັ້ງຮ່ວມກັບ Salmonella, ດັ່ງທີ່ສັງເກດເຫັນໃນການເພາະເລี้ยงຂອງແຫຼວຂອງ Salmonella (124, 125). ການສຶກສາຫຼາຍໆຄັ້ງກ່ຽວກັບອາຫານທີ່ປົນເປື້ອນດ້ວຍ Salmonella ສະໜັບສະໜູນແນວຄວາມຄິດທີ່ວ່າອຸນຫະພູມທີ່ເພີ່ມຂຶ້ນເພີ່ມປະສິດທິພາບຂອງກົດໃນເນື້ອເຍື່ອອາຫານສັດ (106, 113, 126). Amado et al. (127) ໄດ້ໃຊ້ການອອກແບບປະສົມສູນກາງເພື່ອສຶກສາການພົວພັນກັນຂອງອຸນຫະພູມ ແລະ ກົດ (ກົດຟໍມິກ ຫຼື ກົດແລັກຕິກ) ໃນເຊື້ອ Salmonella enterica ແລະ Escherichia coli 10 ສາຍພັນທີ່ແຍກອອກມາຈາກອາຫານງົວຫຼາຍຊະນິດ ແລະ ສັກເຂົ້າໄປໃນເມັດງົວທີ່ມີກົດ. ພວກເຂົາໄດ້ສະຫຼຸບວ່າຄວາມຮ້ອນແມ່ນປັດໄຈຫຼັກທີ່ມີອິດທິພົນຕໍ່ການຫຼຸດຜ່ອນຈຸລິນຊີ, ພ້ອມກັບກົດ ແລະ ປະເພດຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣຍທີ່ແຍກອອກມາ. ຜົນກະທົບຮ່ວມກັນກັບກົດຍັງຄົງມີຢູ່, ສະນັ້ນອຸນຫະພູມຕ່ຳ ແລະ ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດສາມາດໃຊ້ໄດ້. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ພວກເຂົາຍັງໄດ້ສັງເກດເຫັນວ່າຜົນກະທົບຮ່ວມກັນບໍ່ໄດ້ຖືກສັງເກດເຫັນສະເໝີໄປເມື່ອໃຊ້ກົດຟໍມິກ, ເຊິ່ງເຮັດໃຫ້ພວກເຂົາສົງໃສວ່າການລະເຫີຍຂອງກົດຟໍມິກໃນອຸນຫະພູມສູງ ຫຼື ຜົນກະທົບການກັກເກັບຂອງສ່ວນປະກອບຂອງອາຫານສັດແມ່ນປັດໄຈໜຶ່ງ.
ການຈຳກັດອາຍຸການເກັບຮັກສາອາຫານສັດກ່ອນການໃຫ້ສັດກິນແມ່ນວິທີໜຶ່ງທີ່ຈະຄວບຄຸມການນຳເອົາເຊື້ອພະຍາດທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານເຂົ້າສູ່ຮ່າງກາຍຂອງສັດໃນລະຫວ່າງການໃຫ້ອາຫານ. ເຖິງຢ່າງໃດກໍ່ຕາມ, ເມື່ອກົດໃນອາຫານໄດ້ເຂົ້າໄປໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານແລ້ວ, ມັນອາດຈະສືບຕໍ່ອອກລິດໜ້າທີ່ຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີ. ກິດຈະກຳຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຂອງສານກົດທີ່ໃຫ້ຈາກພາຍນອກໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານອາດຈະຂຶ້ນກັບຫຼາຍປັດໃຈ, ລວມທັງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດໃນກະເພາະອາຫານ, ສະຖານທີ່ທີ່ມີການເຄື່ອນໄຫວຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານ, ຄ່າ pH ແລະ ປະລິມານອົກຊີເຈນຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານ, ອາຍຸຂອງສັດ, ແລະ ອົງປະກອບທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຂອງປະຊາກອນຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (ເຊິ່ງຂຶ້ນກັບສະຖານທີ່ຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານ ແລະ ການເຕີບໂຕເຕັມທີ່ຂອງສັດ) (21, 24, 128–132). ນອກຈາກນັ້ນ, ປະຊາກອນຈຸລິນຊີທີ່ບໍ່ມີອາກາດທີ່ຢູ່ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (ເຊິ່ງກາຍເປັນທີ່ໂດດເດັ່ນໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນລຸ່ມຂອງສັດ monogastric ເມື່ອພວກມັນເຕີບໃຫຍ່ເຕັມທີ່) ຜະລິດກົດອິນຊີຢ່າງຫ້າວຫັນຜ່ານການໝັກ, ເຊິ່ງໃນທາງກັບກັນອາດຈະມີຜົນກະທົບຕໍ່ຕ້ານເຊື້ອພະຍາດຊົ່ວຄາວທີ່ເຂົ້າສູ່ລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (17, 19–21).
ການຄົ້ນຄວ້າໃນຕອນຕົ້ນສ່ວນໃຫຍ່ແມ່ນສຸມໃສ່ການນໍາໃຊ້ກົດອິນຊີ, ລວມທັງ formate, ເພື່ອຈໍາກັດ Salmonella ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດປີກ, ເຊິ່ງໄດ້ຖືກປຶກສາຫາລືຢ່າງລະອຽດໃນການທົບທວນຫຼາຍໆຄັ້ງ (12, 20, 21). ເມື່ອພິຈາລະນາການສຶກສາເຫຼົ່ານີ້ຮ່ວມກັນ, ສາມາດສັງເກດການທີ່ສໍາຄັນຫຼາຍຢ່າງໄດ້. McHan ແລະ Shotts (133) ລາຍງານວ່າການໃຫ້ອາຫານກົດ formic ແລະ propionic ຊ່ວຍຫຼຸດລະດັບຂອງ Salmonella Typhimurium ໃນ cecum ຂອງໄກ່ທີ່ໄດ້ຮັບເຊື້ອແບັກທີເຣັຍ ແລະ ວັດແທກປະລິມານຂອງພວກມັນໃນເວລາອາຍຸ 7, 14, ແລະ 21 ມື້. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ເມື່ອ Hume et al. (128) ຕິດຕາມກວດກາ propionate ທີ່ຕິດສະຫຼາກ C-14, ພວກເຂົາໄດ້ສະຫຼຸບວ່າ propionate ໜ້ອຍຫຼາຍໃນອາຫານອາດຈະໄປຮອດ cecum. ມັນຍັງຕ້ອງໄດ້ກໍານົດວ່າສິ່ງນີ້ຍັງເປັນຄວາມຈິງສໍາລັບກົດ formic ຫຼືບໍ່. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ບໍ່ດົນມານີ້ Bourassa et al. (134) ໄດ້ລາຍງານວ່າການໃຫ້ອາຫານກົດຟໍມິກ ແລະ ໂປຣປິໂອນິກ ຊ່ວຍຫຼຸດລະດັບຂອງເຊື້ອ Salmonella Typhimurium ໃນລຳໄສ້ໃຫຍ່ຂອງໄກ່ທີ່ໄດ້ຮັບເຊື້ອແບັກທີເຣຍ, ເຊິ່ງໄດ້ຖືກວັດແທກໃນເວລາອາຍຸ 7, 14, ແລະ 21 ມື້. (132) ໄດ້ສັງເກດເຫັນວ່າການໃຫ້ອາຫານກົດຟໍມິກໃນປະລິມານ 4 g/t ແກ່ໄກ່ປີ້ງໃນໄລຍະການເຕີບໂຕ 6 ອາທິດ ຊ່ວຍຫຼຸດຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງເຊື້ອ S. Typhimurium ໃນລຳໄສ້ໃຫຍ່ໃຫ້ຕໍ່າກວ່າລະດັບການກວດພົບ.
ການມີກົດຟໍມິກຢູ່ໃນອາຫານອາດມີຜົນກະທົບຕໍ່ສ່ວນອື່ນໆຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດປີກ. Al-Tarazi ແລະ Alshavabkeh (134) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າສ່ວນປະສົມຂອງກົດຟໍມິກ ແລະ ກົດໂປຣປິໂອນິກສາມາດຫຼຸດຜ່ອນການປົນເປື້ອນຂອງເຊື້ອ Salmonella pullorum (S. PRlorum) ໃນພືດ ແລະ ລຳໄສ້ໃຫຍ່. Thompson ແລະ Hinton (129) ສັງເກດເຫັນວ່າສ່ວນປະສົມຂອງກົດຟໍມິກ ແລະ ກົດໂປຣປິໂອນິກທີ່ມີຢູ່ໃນທ້ອງຕະຫຼາດເພີ່ມຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດທັງສອງໃນພືດ ແລະ ກະເພາະອາຫານ ແລະ ສາມາດຂ້າເຊື້ອແບັກທີເຣຍ Salmonella Enteritidis PT4 ໃນຮູບແບບ in vitro ພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂການລ້ຽງແບບຕົວແທນ. ແນວຄວາມຄິດນີ້ໄດ້ຮັບການສະໜັບສະໜູນຈາກຂໍ້ມູນໃນຮ່າງກາຍຈາກ Bird et al. (135) ໄດ້ເພີ່ມກົດຟໍມິກໃສ່ນ້ຳດື່ມຂອງໄກ່ປີ້ງໃນຊ່ວງເວລາທີ່ຈຳລອງການອົດອາຫານກ່ອນການຂົນສົ່ງ, ຄ້າຍຄືກັບໄກ່ປີ້ງທີ່ອົດອາຫານກ່ອນການຂົນສົ່ງໄປຍັງໂຮງງານປຸງແຕ່ງສັດປີກ. ການເພີ່ມກົດຟໍມິກໃສ່ນ້ຳດື່ມເຮັດໃຫ້ຈຳນວນເຊື້ອ S. Typhimurium ໃນພືດ ແລະ ທໍ່ອະສຸຈິຫຼຸດລົງ, ແລະ ອັດຕາການເປັນພະຍາດຂອງພືດທີ່ມີເຊື້ອ S. Typhimurium ຫຼຸດລົງ, ແຕ່ບໍ່ໄດ້ຫຼຸດລົງໃນຈຳນວນທໍ່ອະສຸຈິທີ່ມີເຊື້ອ (135). ການພັດທະນາລະບົບການສົ່ງເຊື້ອທີ່ສາມາດປົກປ້ອງກົດອິນຊີໃນຂະນະທີ່ພວກມັນມີການເຄື່ອນໄຫວຢູ່ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນລຸ່ມອາດຈະຊ່ວຍປັບປຸງປະສິດທິພາບ. ຕົວຢ່າງ, ການຫຸ້ມຫໍ່ກົດຟໍມິກແບບຈຸນລະພາກ ແລະ ການເພີ່ມມັນໃສ່ອາຫານສັດໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າສາມາດຫຼຸດຜ່ອນຈຳນວນເຊື້ອ Salmonella Enteritidis ໃນປະລິມານອາຈົມ (136). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ສິ່ງນີ້ອາດຈະແຕກຕ່າງກັນໄປຕາມຊະນິດສັດ. ຕົວຢ່າງ, Walia ແລະ ຄະນະ (137) ບໍ່ໄດ້ສັງເກດເຫັນການຫຼຸດລົງຂອງເຊື້ອ Salmonella ໃນຕ່ອມນ້ຳເຫຼືອງ ຫຼື ຕ່ອມນ້ຳເຫຼືອງຂອງໝູອາຍຸ 28 ວັນທີ່ກິນອາຫານປະສົມຂອງກົດຟໍມິກ, ກົດຊິຕຣິກ, ແລະ ແຄບຊູນນ້ຳມັນຫອມລະເຫີຍ, ແລະ ເຖິງແມ່ນວ່າການຂັບຖ່າຍຂອງເຊື້ອ Salmonella ໃນອາຈົມໄດ້ຫຼຸດລົງໃນມື້ທີ 14, ແຕ່ມັນບໍ່ໄດ້ຫຼຸດລົງໃນມື້ທີ 28. ພວກເຂົາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການຖ່າຍທອດເຊື້ອ Salmonella ໃນແນວນອນລະຫວ່າງໝູໄດ້ຖືກປ້ອງກັນ.
ເຖິງແມ່ນວ່າການສຶກສາກ່ຽວກັບກົດຟໍມິກໃນຖານະເປັນສານຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີໃນການລ້ຽງສັດໄດ້ສຸມໃສ່ເຊື້ອ Salmonella ທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານເປັນຫຼັກ, ແຕ່ກໍມີການສຶກສາບາງຢ່າງທີ່ແນໃສ່ເຊື້ອພະຍາດລະບົບຍ່ອຍອາຫານອື່ນໆທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານ. ການສຶກສາໃນຫຼອດທົດລອງໂດຍ Kovanda et al. (68) ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າກົດຟໍມິກອາດຈະມີປະສິດທິພາບຕໍ່ກັບເຊື້ອພະຍາດລະບົບຍ່ອຍອາຫານອື່ນໆທີ່ຕິດຕໍ່ທາງອາຫານ, ລວມທັງ Escherichia coli ແລະ Campylobacter jejuni. ການສຶກສາກ່ອນໜ້ານີ້ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າກົດອິນຊີ (ເຊັ່ນ: ກົດແລັກຕິກ) ແລະສ່ວນປະສົມທາງການຄ້າທີ່ມີກົດຟໍມິກເປັນສ່ວນປະກອບສາມາດຫຼຸດລະດັບ Campylobacter ໃນສັດປີກໄດ້ (135, 138). ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ລະບຸໄວ້ກ່ອນໜ້ານີ້ໂດຍ Beyer et al. (67), ການໃຊ້ກົດຟໍມິກເປັນຕົວແທນຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີຕໍ່ຕ້ານ Campylobacter ອາດຈະຕ້ອງການຄວາມລະມັດລະວັງ. ການຄົ້ນພົບນີ້ແມ່ນມີບັນຫາໂດຍສະເພາະສຳລັບການເສີມອາຫານໃນສັດປີກເພາະວ່າກົດຟໍມິກແມ່ນແຫຼ່ງພະລັງງານການຫາຍໃຈຫຼັກສຳລັບ C. jejuni. ນອກຈາກນັ້ນ, ສ່ວນໜຶ່ງຂອງຊ່ອງຍ່ອຍອາຫານຂອງມັນຖືກຄິດວ່າເປັນຍ້ອນການກິນອາຫານຂ້າມລະບົບການເຜົາຜານອາຫານກັບຜະລິດຕະພັນການໝັກກົດປະສົມທີ່ຜະລິດໂດຍເຊື້ອແບັກທີເຣັຍລະບົບຍ່ອຍອາຫານ, ເຊັ່ນ formate (139). ທັດສະນະນີ້ມີພື້ນຖານບາງຢ່າງ. ເນື່ອງຈາກວ່າ formate ເປັນສານດຶງດູດທາງເຄມີສຳລັບ C. jejuni, ເຊື້ອແບັກທີເຣັຍທີ່ກາຍພັນຄູ່ທີ່ມີຂໍ້ບົກຜ່ອງທັງ formate dehydrogenase ແລະ hydrogenase ມີອັດຕາການເພີ່ມຂື້ນຂອງອານານິຄົມໃນລຳໄສ້ໃນໄກ່ປີ້ງຫຼຸດລົງເມື່ອທຽບກັບເຊື້ອແບັກທີເຣັຍ C. jejuni ປະເພດທຳມະຊາດ (140, 141). ມັນຍັງບໍ່ຈະແຈ້ງເທື່ອວ່າການເສີມກົດ formic ພາຍນອກມີຜົນກະທົບຕໍ່ການເພີ່ມຂື້ນຂອງອານານິຄົມໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານໂດຍ C. jejuni ໃນໄກ່ໃນລະດັບໃດ. ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ format ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຕົວຈິງອາດຈະຕໍ່າກວ່າຍ້ອນການເຜົາຜານ format ໂດຍເຊື້ອແບັກທີເຣັຍໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານອື່ນໆ ຫຼື ການດູດຊຶມ format ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນເທິງ, ສະນັ້ນຕົວແປຫຼາຍຢ່າງອາດມີອິດທິພົນຕໍ່ສິ່ງນີ້. ນອກຈາກນັ້ນ, formate ແມ່ນຜະລິດຕະພັນການໝັກທີ່ມີທ່າແຮງທີ່ຜະລິດໂດຍເຊື້ອແບັກທີເຣັຍໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານບາງຊະນິດ, ເຊິ່ງອາດຈະມີອິດທິພົນຕໍ່ລະດັບ format ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານທັງໝົດ. ການວັດແທກປະລິມານຂອງ format ໃນເນື້ອໃນຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານ ແລະ ການກຳນົດ genes formate dehydrogenase ໂດຍໃຊ້ metagenomics ອາດຈະເຮັດໃຫ້ເຫັນເຖິງບາງດ້ານຂອງລະບົບນິເວດວິທະຍາຂອງຈຸລິນຊີທີ່ຜະລິດ format.
Roth ແລະ ຄະນະ (142) ໄດ້ປຽບທຽບຜົນກະທົບຂອງການໃຫ້ອາຫານໄກ່ປີ້ງດ້ວຍຢາຕ້ານເຊື້ອ enrofloxacin ຫຼື ສ່ວນປະສົມຂອງກົດ formic, acetic, ແລະ propionic ຕໍ່ອັດຕາການແຜ່ລະບາດຂອງ Escherichia coli ທີ່ດື້ຢາຕ້ານເຊື້ອ. ເຊື້ອ E. coli ທັງໝົດ ແລະ ເຊື້ອທີ່ດື້ຢາຕ້ານເຊື້ອໄດ້ຖືກນັບໃນຕົວຢ່າງອາຈົມທີ່ລວບລວມຈາກໄກ່ປີ້ງອາຍຸ 1 ມື້ ແລະ ໃນຕົວຢ່າງປະລິມານອາຈົມຈາກໄກ່ປີ້ງອາຍຸ 14 ແລະ 38 ມື້. ເຊື້ອ E. coli ໄດ້ຖືກທົດສອບຄວາມຕ້ານທານຕໍ່ ampicillin, cefotaxime, ciprofloxacin, streptomycin, sulfamethoxazole, ແລະ tetracycline ຕາມຈຸດແຕກແຍກທີ່ກຳນົດໄວ້ກ່ອນໜ້ານີ້ສຳລັບຢາຕ້ານເຊື້ອແຕ່ລະຊະນິດ. ເມື່ອປະຊາກອນ E. coli ທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຖືກວັດແທກ ແລະ ລະບຸລັກສະນະ, ທັງ enrofloxacin ແລະ ການເສີມອາຊິດຄັອກເທວບໍ່ໄດ້ປ່ຽນແປງຈຳນວນທັງໝົດຂອງ E. coli ທີ່ແຍກອອກຈາກອາຈົມຂອງໄກ່ປີ້ງອາຍຸ 17 ແລະ 28 ມື້. ນົກທີ່ກິນອາຫານເສີມ enrofloxacin ມີລະດັບຂອງ ciprofloxacin, streptomycin, sulfamethoxazole, ແລະ tetracycline ທີ່ດື້ຢາ E. coli ເພີ່ມຂຶ້ນ ແລະ ລະດັບຂອງ cefotaxime ທີ່ດື້ຢາ E. coli ຫຼຸດລົງໃນລຳໄສ້ໃຫຍ່. ນົກທີ່ກິນອາຫານປະສົມມີຈຳນວນຂອງ ampicillin ແລະ tetracycline ທີ່ດື້ຢາ E. coli ໃນລຳໄສ້ໃຫຍ່ຫຼຸດລົງເມື່ອທຽບກັບກຸ່ມຄວບຄຸມ ແລະ ນົກທີ່ກິນອາຫານເສີມ enrofloxacin. ນົກທີ່ກິນອາຫານປະສົມກົດຍັງມີຈຳນວນຂອງ E. coli ທີ່ດື້ຢາ ciprofloxacin ແລະ sulfamethoxazole ໃນລຳໄສ້ໃຫຍ່ຫຼຸດລົງເມື່ອທຽບກັບນົກທີ່ກິນອາຫານ enrofloxacin. ກົນໄກທີ່ກົດຫຼຸດຜ່ອນຈຳນວນຂອງ E. coli ທີ່ດື້ຢາຕ້ານເຊື້ອໂດຍບໍ່ຫຼຸດຜ່ອນຈຳນວນທັງໝົດຂອງ E. coli ຍັງບໍ່ຊັດເຈນ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ຜົນຂອງການສຶກສາໂດຍ Roth ແລະ ຄະນະແມ່ນສອດຄ່ອງກັບຜົນຂອງກຸ່ມ enrofloxacin. (142) ນີ້ອາດຈະເປັນຕົວຊີ້ບອກເຖິງການແຜ່ລະບາດທີ່ຫຼຸດລົງຂອງເຊື້ອທີ່ຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອໃນ E. coli, ເຊັ່ນ: ຕົວຍັບຍັ້ງທີ່ເຊື່ອມໂຍງກັບ plasmid ທີ່ອະທິບາຍໂດຍ Cabezon et al. (143). ມັນຈະເປັນສິ່ງທີ່ໜ້າສົນໃຈທີ່ຈະດຳເນີນການວິເຄາະຢ່າງເລິກເຊິ່ງກ່ຽວກັບການຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອທີ່ມີ plasmid ເປັນສື່ກາງໃນປະຊາກອນສັດປີກທີ່ມີອາການຍ່ອຍອາຫານເຊັ່ນ: ກົດຟໍມິກ ແລະ ເພື່ອປັບປຸງການວິເຄາະນີ້ຕື່ມອີກໂດຍການປະເມີນຄວາມຕ້ານທານຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານ.
ການພັດທະນາສານເຕີມແຕ່ງອາຫານຕ້ານເຊື້ອພະຍາດທີ່ດີທີ່ສຸດຕໍ່ເຊື້ອພະຍາດຄວນມີຜົນກະທົບໜ້ອຍທີ່ສຸດຕໍ່ພືດໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານໂດຍລວມ, ໂດຍສະເພາະຕໍ່ຈຸລິນຊີທີ່ຖືວ່າເປັນປະໂຫຍດຕໍ່ເຈົ້າພາບ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ກົດອິນຊີທີ່ໃຫ້ຈາກພາຍນອກສາມາດມີຜົນກະທົບທີ່ບໍ່ດີຕໍ່ຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານທີ່ຢູ່ອາໄສ ແລະ ໃນລະດັບໜຶ່ງເຮັດໃຫ້ຄຸນສົມບັດປ້ອງກັນຂອງມັນຕໍ່ຕ້ານເຊື້ອພະຍາດຫຼຸດລົງ. ຕົວຢ່າງ, Thompson ແລະ Hinton (129) ໄດ້ສັງເກດເຫັນລະດັບກົດ lactic ຂອງພືດຫຼຸດລົງໃນໄກ່ໄຂ່ທີ່ລ້ຽງດ້ວຍສ່ວນປະສົມຂອງກົດ formic ແລະ propionic, ເຊິ່ງຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າການມີກົດອິນຊີພາຍນອກເຫຼົ່ານີ້ໃນພືດເຮັດໃຫ້ lactobacilli ຂອງພືດຫຼຸດລົງ. lactobacilli ຂອງພືດຖືກຖືວ່າເປັນອຸປະສັກຕໍ່ Salmonella, ແລະດັ່ງນັ້ນການລົບກວນຂອງຈຸລິນຊີພືດທີ່ອາໄສຢູ່ນີ້ອາດຈະເປັນອັນຕະລາຍຕໍ່ການຫຼຸດຜ່ອນຄວາມສຳເລັດຂອງການເປັນອານານິຄົມຂອງ Salmonella ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ (144). Açıkgöz et al. ພົບວ່າຜົນກະທົບຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານທີ່ຕ່ຳກວ່າຂອງນົກອາດຈະຕ່ຳກວ່າ. (145) ບໍ່ພົບຄວາມແຕກຕ່າງໃນພືດໃນລຳໄສ້ທັງໝົດ ຫຼື ຈຳນວນ Escherichia coli ໃນນ້ຳດື່ມໄກ່ປີ້ງອາຍຸ 42 ວັນທີ່ມີກົດ formic ເປັນກົດ. ຜູ້ຂຽນໄດ້ແນະນຳວ່າສິ່ງນີ້ອາດຈະເປັນຍ້ອນຮູບແບບຖືກເຜົາຜານໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນເທິງ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ສັງເກດເຫັນໂດຍນັກຄົ້ນຄວ້າຄົນອື່ນໆດ້ວຍກົດໄຂມັນຕ່ອງໂສ້ສັ້ນ (SCFA) ທີ່ໃຫ້ຈາກພາຍນອກ (128, 129).
ການປົກປ້ອງກົດຟໍມິກຜ່ານການຫຸ້ມຫໍ່ບາງຮູບແບບອາດຈະຊ່ວຍໃຫ້ມັນໄປຮອດລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນລຸ່ມ. (146) ໄດ້ສັງເກດເຫັນວ່າກົດຟໍມິກທີ່ຖືກຫຸ້ມຫໍ່ດ້ວຍຈຸນລະພາກໄດ້ເພີ່ມປະລິມານກົດໄຂມັນຕ່ອງໂສ້ສັ້ນ (SCFA) ທັງໝົດໃນລຳໄສ້ໃຫຍ່ຂອງໝູຢ່າງຫຼວງຫຼາຍເມື່ອທຽບກັບໝູທີ່ໄດ້ຮັບກົດຟໍມິກທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການປົກປ້ອງ. ຜົນໄດ້ຮັບນີ້ເຮັດໃຫ້ຜູ້ຂຽນແນະນຳວ່າກົດຟໍມິກອາດຈະໄປຮອດລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນລຸ່ມໄດ້ຢ່າງມີປະສິດທິພາບຖ້າມັນຖືກປົກປ້ອງຢ່າງຖືກຕ້ອງ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ພາລາມິເຕີອື່ນໆຈຳນວນໜຶ່ງ, ເຊັ່ນ: ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງຟໍມິກ ແລະ ແລັກເຕດ, ເຖິງແມ່ນວ່າຈະສູງກວ່າພາລາມິເຕີໃນໝູທີ່ໄດ້ຮັບອາຫານຄວບຄຸມ, ແຕ່ບໍ່ແຕກຕ່າງກັນທາງສະຖິຕິຈາກພາລາມິເຕີໃນໝູທີ່ໄດ້ຮັບອາຫານຟໍມິກທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການປົກປ້ອງ. ເຖິງແມ່ນວ່າໝູທີ່ໄດ້ຮັບທັງກົດຟໍມິກທີ່ບໍ່ໄດ້ຮັບການປົກປ້ອງ ແລະ ໄດ້ຮັບການປົກປ້ອງສະແດງໃຫ້ເຫັນການເພີ່ມຂຶ້ນເກືອບສາມເທົ່າຂອງກົດແລັກຕິກ, ແຕ່ຈຳນວນແລັກໂຕບາຊີລີບໍ່ໄດ້ປ່ຽນແປງໂດຍການປິ່ນປົວທັງສອງຢ່າງ. ຄວາມແຕກຕ່າງອາດຈະເຫັນໄດ້ຊັດເຈນກວ່າສຳລັບຈຸລິນຊີທີ່ຜະລິດກົດແລັກຕິກອື່ນໆໃນລຳໄສ້ໃຫຍ່ (1) ທີ່ບໍ່ໄດ້ຖືກກວດພົບໂດຍວິທີການເຫຼົ່ານີ້ ແລະ/ຫຼື (2) ທີ່ກິດຈະກຳການເຜົາຜານອາຫານໄດ້ຮັບຜົນກະທົບ, ດັ່ງນັ້ນຈຶ່ງປ່ຽນແປງຮູບແບບການໝັກເພື່ອໃຫ້ແລັກໂຕບາຊີລີທີ່ຢູ່ອາໄສຜະລິດກົດແລັກຕິກຫຼາຍຂຶ້ນ.
ເພື່ອສຶກສາຜົນກະທົບຂອງສານເຕີມແຕ່ງອາຫານສັດຕໍ່ລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດລ້ຽງໃນຟາມໄດ້ຢ່າງຖືກຕ້ອງກວ່າ, ຈຳເປັນຕ້ອງມີວິທີການກຳນົດຈຸລິນຊີທີ່ມີຄວາມລະອຽດສູງກວ່າ. ໃນສອງສາມປີຜ່ານມາ, ການຈັດລຳດັບລຸ້ນຕໍ່ໄປ (NGS) ຂອງ gene RNA 16S ໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເພື່ອກໍານົດ taxa ຂອງຈຸລິນຊີ ແລະ ປຽບທຽບຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີ (147), ເຊິ່ງໄດ້ໃຫ້ຄວາມເຂົ້າໃຈທີ່ດີຂຶ້ນກ່ຽວກັບການພົວພັນລະຫວ່າງສານເຕີມແຕ່ງອາຫານສັດ ແລະ ຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງສັດອາຫານເຊັ່ນ: ສັດປີກ.
ການສຶກສາຫຼາຍໆຄັ້ງໄດ້ໃຊ້ການຈັດລຳດັບຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານເພື່ອປະເມີນການຕອບສະໜອງຂອງຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງໄກ່ຕໍ່ກັບການສ້າງຮູບແບບອາຫານເສີມ. Oakley ແລະ ເພື່ອນຮ່ວມງານ (148) ໄດ້ດຳເນີນການສຶກສາໃນໄກ່ປີ້ງອາຍຸ 42 ມື້ທີ່ເສີມດ້ວຍການປະສົມປະສານຕ່າງໆຂອງກົດຟໍມິກ, ກົດໂປຣປິໂອນິກ, ແລະ ກົດໄຂມັນລະບົບຕ່ອງໂສ້ຂະໜາດກາງໃນນ້ຳດື່ມ ຫຼື ອາຫານສັດຂອງພວກມັນ. ໄກ່ທີ່ໄດ້ຮັບການສັກຢາປ້ອງກັນໄດ້ຖືກທົດສອບດ້ວຍເຊື້ອ Salmonella typhimurium ທີ່ທົນທານຕໍ່ກົດ nalidixic ແລະ ອາຈົມຂອງພວກມັນໄດ້ຖືກກຳຈັດອອກໃນເວລາອາຍຸ 0, 7, 21, ແລະ 42 ມື້. ຕົວຢ່າງອາຈົມໄດ້ຖືກກະກຽມສຳລັບ pyrosequencing 454 ຄັ້ງ ແລະ ຜົນການຈັດລຳດັບໄດ້ຖືກປະເມີນສຳລັບການຈັດປະເພດ ແລະ ການປຽບທຽບຄວາມຄ້າຍຄືກັນ. ໂດຍລວມແລ້ວ, ການປິ່ນປົວບໍ່ໄດ້ມີຜົນກະທົບຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ລະດັບຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ ຫຼື S. Typhimurium. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ອັດຕາການກວດພົບ Salmonella ໂດຍລວມຫຼຸດລົງເມື່ອນົກມີອາຍຸຫຼາຍຂຶ້ນ, ຕາມການຢືນຢັນໂດຍການວິເຄາະດ້ານການຈັດປະເພດຂອງຈຸລິນຊີ, ແລະ ຄວາມອຸດົມສົມບູນທີ່ກ່ຽວຂ້ອງຂອງລຳດັບ Salmonella ກໍ່ຫຼຸດລົງຕາມການເວລາ. ຜູ້ຂຽນສັງເກດເຫັນວ່າ ເມື່ອໄກ່ປີ້ງມີອາຍຸຫຼາຍຂຶ້ນ, ຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງປະຊາກອນຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ກໍ່ເພີ່ມຂຶ້ນ, ໂດຍມີການປ່ຽນແປງທີ່ສຳຄັນທີ່ສຸດໃນພືດໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານທີ່ສັງເກດເຫັນໃນທຸກກຸ່ມທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວ. ໃນການສຶກສາທີ່ຜ່ານມາ, Hu et al. (149) ໄດ້ປຽບທຽບຜົນກະທົບຂອງການດື່ມນ້ຳ ແລະ ການກິນອາຫານທີ່ເສີມດ້ວຍສ່ວນປະສົມຂອງກົດອິນຊີ (ກົດຟໍມິກ, ກົດອະຊິຕິກ, ກົດໂປຣພິໂອນິກ, ແລະ ແອມໂມນຽມຟໍເມຕ໌) ແລະ ເວີຈິນເນຍໄມຊິນ ໃນຕົວຢ່າງຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ຈາກໄກ່ປີ້ງທີ່ເກັບມາໃນສອງໄລຍະ (1-21 ມື້ ແລະ 22-42 ມື້). ເຖິງແມ່ນວ່າຈະມີຄວາມແຕກຕ່າງບາງຢ່າງໃນຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ໃນບັນດາກຸ່ມທີ່ໄດ້ຮັບການປິ່ນປົວໃນເວລາອາຍຸ 21 ມື້, ແຕ່ບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງໃນຄວາມຫຼາກຫຼາຍຂອງ α- ຫຼື β-bacteria ທີ່ພົບໃນເວລາອາຍຸ 42 ມື້. ເນື່ອງຈາກບໍ່ມີຄວາມແຕກຕ່າງໃນເວລາອາຍຸ 42 ມື້, ຜູ້ຂຽນໄດ້ສົມມຸດຕິຖານວ່າຂໍ້ໄດ້ປຽບໃນການເຕີບໂຕອາດຈະເປັນຍ້ອນການສ້າງຕັ້ງຈຸລິນຊີທີ່ມີຄວາມຫຼາກຫຼາຍດີທີ່ສຸດກ່ອນໄວອັນຄວນ.
ການວິເຄາະຈຸລິນຊີທີ່ສຸມໃສ່ພຽງແຕ່ຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ອາດຈະບໍ່ສະທ້ອນເຖິງບ່ອນທີ່ມີຜົນກະທົບສ່ວນໃຫຍ່ຂອງກົດອິນຊີໃນອາຫານເກີດຂຶ້ນໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ. ຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນເທິງຂອງໄກ່ປີ້ງອາດຈະມີຄວາມອ່ອນໄຫວຕໍ່ຜົນກະທົບຂອງກົດອິນຊີໃນອາຫານຫຼາຍກວ່າ, ດັ່ງທີ່ໄດ້ແນະນຳໂດຍຜົນໄດ້ຮັບຂອງ Hume et al. (128). Hume et al. (128) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າ propionate ທີ່ເພີ່ມເຂົ້າຈາກພາຍນອກສ່ວນໃຫຍ່ຖືກດູດຊຶມໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນເທິງຂອງນົກ. ການສຶກສາຫຼ້າສຸດກ່ຽວກັບລັກສະນະຂອງຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຍັງສະໜັບສະໜູນທັດສະນະນີ້. Nava et al. (150) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການປະສົມປະສານຂອງສ່ວນປະສົມຂອງກົດອິນຊີ [DL-2-hydroxy-4(methylthio)butyric acid], ກົດ formic, ແລະ ກົດ propionic (HFP) ມີຜົນກະທົບຕໍ່ຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ ແລະ ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງ Lactobacillus ໃນ ileum ຂອງໄກ່. ເມື່ອບໍ່ດົນມານີ້, Goodarzi Borojeni et al. (150) ໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າການປະສົມປະສານຂອງສ່ວນປະສົມຂອງກົດອິນຊີ [DL-2-hydroxy-4(methylthio)butyric acid], ກົດຟໍມິກ, ແລະ ກົດໂປຣປິໂອນິກ (HFP) ມີຜົນກະທົບຕໍ່ຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ ແລະ ເພີ່ມການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງ Lactobacillus ໃນລຳໄສ້ນ້ອຍຂອງໄກ່. (151) ໄດ້ສຶກສາການໃຫ້ອາຫານໄກ່ປີ້ງທີ່ມີສ່ວນປະສົມຂອງກົດຟໍມິກ ແລະ ກົດໂປຣປິໂອນິກໃນສອງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນ (0.75% ແລະ 1.50%) ເປັນເວລາ 35 ມື້. ໃນຕອນທ້າຍຂອງການທົດລອງ, ຮາກ, ກະເພາະອາຫານ, ສອງສ່ວນສາມຂອງລຳໄສ້ນ້ອຍ, ແລະ ລຳໄສ້ໃຫຍ່ໄດ້ຖືກເອົາອອກ ແລະ ຕົວຢ່າງໄດ້ຖືກເກັບມາເພື່ອການວິເຄາະດ້ານປະລິມານຂອງພືດ ແລະ ສານເຜົາຜານອາຫານສະເພາະໂດຍໃຊ້ RT-PCR. ໃນການເພາະເລี้ยง, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດອິນຊີບໍ່ໄດ້ສົ່ງຜົນກະທົບຕໍ່ຄວາມອຸດົມສົມບູນຂອງ Lactobacillus ຫຼື Bifidobacterium, ແຕ່ເພີ່ມປະຊາກອນຂອງ Clostridium. ໃນລຳໄສ້ນ້ອຍ, ການປ່ຽນແປງພຽງແຕ່ແມ່ນການຫຼຸດລົງຂອງ Lactobacillus ແລະ Enterobacter, ໃນຂະນະທີ່ໃນລຳໄສ້ນ້ອຍຂອງສັດເຫຼົ່ານີ້ຍັງຄົງບໍ່ປ່ຽນແປງ (151). ໃນຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສູງສຸດຂອງການເສີມກົດອິນຊີ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດແລັກຕິກທັງໝົດ (D ແລະ L) ໄດ້ຫຼຸດລົງໃນພືດ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດອິນຊີທັງສອງຫຼຸດລົງໃນກະເພາະອາຫານ, ແລະຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດອິນຊີຕ່ຳລົງໃນ cecum. ບໍ່ມີການປ່ຽນແປງໃນ ileum. ກ່ຽວກັບກົດໄຂມັນຕ່ອງໂສ້ສັ້ນ (SCFAs), ການປ່ຽນແປງພຽງຢ່າງດຽວໃນພືດ ແລະ ກະເພາະອາຫານຂອງນົກທີ່ໃຫ້ກົດອິນຊີແມ່ນຢູ່ໃນລະດັບ propionate. ນົກທີ່ໃຫ້ກົດອິນຊີທີ່ມີຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຕ່ຳສະແດງໃຫ້ເຫັນການເພີ່ມຂຶ້ນເກືອບສິບເທົ່າຂອງ propionate ໃນພືດ, ໃນຂະນະທີ່ນົກທີ່ໃຫ້ກົດອິນຊີສອງຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນສະແດງໃຫ້ເຫັນການເພີ່ມຂຶ້ນແປດ ແລະ ສິບຫ້າເທົ່າຂອງ propionate ໃນກະເພາະອາຫານ, ຕາມລຳດັບ. ການເພີ່ມຂຶ້ນຂອງ acetate ໃນ ileum ແມ່ນໜ້ອຍກວ່າສອງເທົ່າ. ໂດຍລວມແລ້ວ, ຂໍ້ມູນເຫຼົ່ານີ້ສະໜັບສະໜູນທັດສະນະທີ່ວ່າຜົນກະທົບສ່ວນໃຫຍ່ຂອງການໃຊ້ກົດອິນຊີພາຍນອກແມ່ນເຫັນໄດ້ຊັດເຈນໃນຜົນຜະລິດ, ໃນຂະນະທີ່ກົດອິນຊີມີຜົນກະທົບໜ້ອຍທີ່ສຸດຕໍ່ຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນລຸ່ມ, ຊີ້ໃຫ້ເຫັນວ່າຮູບແບບການໝັກຂອງພືດທີ່ອາໄສຢູ່ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນເທິງອາດຈະມີການປ່ຽນແປງ.
ແນ່ນອນວ່າ, ຕ້ອງມີການວິເຄາະລັກສະນະທີ່ເລິກເຊິ່ງກວ່າຂອງຈຸລິນຊີເພື່ອອະທິບາຍການຕອບສະໜອງຂອງຈຸລິນຊີໃຫ້ເກີດຂຶ້ນທົ່ວລະບົບຍ່ອຍອາຫານ. ການວິເຄາະທີ່ເລິກເຊິ່ງກວ່າກ່ຽວກັບການຈັດປະເພດຈຸລິນຊີຂອງຊ່ອງຍ່ອຍອາຫານສະເພາະ, ໂດຍສະເພາະຊ່ອງເທິງເຊັ່ນ: ພືດ, ອາດຈະໃຫ້ຄວາມເຂົ້າໃຈເພີ່ມເຕີມກ່ຽວກັບການເລືອກກຸ່ມຈຸລິນຊີທີ່ແນ່ນອນ. ກິດຈະກຳການເຜົາຜານອາຫານ ແລະ ເອນໄຊມຂອງພວກມັນອາດຈະກຳນົດວ່າພວກມັນມີຄວາມສຳພັນທີ່ເປັນສັດຕູກັບເຊື້ອພະຍາດທີ່ເຂົ້າສູ່ລະບົບຍ່ອຍອາຫານຫຼືບໍ່. ມັນຍັງເປັນສິ່ງທີ່ໜ້າສົນໃຈທີ່ຈະດຳເນີນການວິເຄາະ metagenomic ເພື່ອກຳນົດວ່າການສຳຜັດກັບສານເຄມີທີ່ເປັນກົດໃນຊ່ວງຊີວິດຂອງນົກເລືອກເຊື້ອແບັກທີເຣຍທີ່ອາໄສຢູ່ໃນ “ທົນທານຕໍ່ກົດ” ຫຼາຍຂຶ້ນຫຼືບໍ່, ແລະວ່າການມີຢູ່ ແລະ/ຫຼື ກິດຈະກຳການເຜົາຜານອາຫານຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣຍເຫຼົ່ານີ້ຈະເປັນອຸປະສັກເພີ່ມເຕີມຕໍ່ການຈະເລີນເຕີບໂຕຂອງເຊື້ອພະຍາດຫຼືບໍ່.
ກົດຟໍມິກໄດ້ຖືກນໍາໃຊ້ເປັນເວລາຫຼາຍປີເປັນສານເຄມີເພີ່ມເຕີມໃນອາຫານສັດ ແລະ ເປັນຕົວເພີ່ມກົດໃນກະເພາະອາຫານສັດ. ໜຶ່ງໃນການນໍາໃຊ້ຫຼັກຂອງມັນແມ່ນການຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີເພື່ອຈໍາກັດຈໍານວນເຊື້ອພະຍາດໃນອາຫານສັດ ແລະ ການສືບພັນຂອງພວກມັນໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຂອງນົກ. ການສຶກສາໃນຫຼອດທົດລອງໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າກົດຟໍມິກເປັນສານຕ້ານເຊື້ອຈຸລິນຊີທີ່ມີປະສິດທິພາບຂ້ອນຂ້າງຕໍ່ກັບ Salmonella ແລະ ເຊື້ອພະຍາດອື່ນໆ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການໃຊ້ກົດຟໍມິກໃນອາຫານສັດອາດຈະຖືກຈໍາກັດໂດຍປະລິມານສານອິນຊີສູງໃນສ່ວນປະກອບອາຫານສັດ ແລະ ຄວາມສາມາດໃນການປ້ອງກັນທີ່ເປັນໄປໄດ້ຂອງມັນ. ກົດຟໍມິກເບິ່ງຄືວ່າມີຜົນກະທົບຕໍ່ຕ້ານ Salmonella ແລະ ເຊື້ອພະຍາດອື່ນໆເມື່ອກິນຜ່ານອາຫານສັດ ຫຼື ນໍ້າດື່ມ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ການຕໍ່ຕ້ານນີ້ເກີດຂຶ້ນຕົ້ນຕໍໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນເທິງ, ຍ້ອນວ່າຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງກົດຟໍມິກອາດຈະຫຼຸດລົງໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນລຸ່ມ, ເຊັ່ນດຽວກັນກັບກົດໂປຣປິໂອນິກ. ແນວຄວາມຄິດຂອງການປົກປ້ອງກົດຟໍມິກຜ່ານການຫຸ້ມຫໍ່ສະເໜີວິທີການທີ່ມີທ່າແຮງໃນການສົ່ງກົດຫຼາຍຂຶ້ນໄປສູ່ລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນລຸ່ມ. ນອກຈາກນັ້ນ, ການສຶກສາໄດ້ສະແດງໃຫ້ເຫັນວ່າສ່ວນປະສົມຂອງກົດອິນຊີມີປະສິດທິພາບຫຼາຍກວ່າໃນການປັບປຸງປະສິດທິພາບຂອງສັດປີກກ່ວາການໃຫ້ກົດດຽວ (152). Campylobacter ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານອາດຈະຕອບສະໜອງຕໍ່ format ແຕກຕ່າງກັນ, ຍ້ອນວ່າມັນສາມາດໃຊ້ format ເປັນຜູ້ໃຫ້ເອເລັກຕຣອນ, ແລະ format ແມ່ນແຫຼ່ງພະລັງງານຫຼັກຂອງມັນ. ມັນຍັງບໍ່ຈະແຈ້ງວ່າການເພີ່ມຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງ format ໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຈະເປັນປະໂຫຍດຕໍ່ Campylobacter ຫຼືບໍ່, ແລະສິ່ງນີ້ອາດຈະບໍ່ເກີດຂຶ້ນຂຶ້ນກັບພືດລະບົບຍ່ອຍອາຫານອື່ນໆທີ່ສາມາດໃຊ້ format ເປັນຊັ້ນຮອງ.
ຕ້ອງມີການສຶກສາເພີ່ມເຕີມເພື່ອສືບສວນຜົນກະທົບຂອງກົດຟໍມິກໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານຕໍ່ຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານທີ່ບໍ່ເປັນພະຍາດ. ພວກເຮົາມັກເລືອກເປົ້າໝາຍເຊື້ອພະຍາດໂດຍບໍ່ລົບກວນສະມາຊິກຂອງຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານທີ່ເປັນປະໂຫຍດຕໍ່ເຈົ້າພາບ. ຢ່າງໃດກໍຕາມ, ສິ່ງນີ້ຮຽກຮ້ອງໃຫ້ມີການວິເຄາະຢ່າງເລິກເຊິ່ງກ່ຽວກັບລໍາດັບຈຸລິນຊີຂອງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານເຫຼົ່ານີ້. ເຖິງແມ່ນວ່າການສຶກສາບາງຢ່າງໄດ້ຖືກເຜີຍແຜ່ກ່ຽວກັບຈຸລິນຊີໃນລຳໄສ້ຂອງນົກທີ່ໄດ້ຮັບກົດຟໍມິກ, ແຕ່ຕ້ອງມີຄວາມສົນໃຈຫຼາຍຂຶ້ນຕໍ່ຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານສ່ວນເທິງ. ການລະບຸຈຸລິນຊີ ແລະ ການປຽບທຽບຄວາມຄ້າຍຄືກັນລະຫວ່າງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານໃນເວລາທີ່ມີ ຫຼື ບໍ່ມີກົດຟໍມິກອາດເປັນຄໍາອະທິບາຍທີ່ບໍ່ຄົບຖ້ວນ. ການວິເຄາະເພີ່ມເຕີມ, ລວມທັງ metabolomics ແລະ metagenomics, ແມ່ນຈໍາເປັນເພື່ອລະບຸຄວາມແຕກຕ່າງທາງດ້ານໜ້າທີ່ລະຫວ່າງກຸ່ມທີ່ຄ້າຍຄືກັນທາງດ້ານສ່ວນປະກອບ. ການກໍານົດລັກສະນະດັ່ງກ່າວແມ່ນມີຄວາມສໍາຄັນຫຼາຍເພື່ອສ້າງຄວາມສໍາພັນລະຫວ່າງຊຸມຊົນຈຸລິນຊີໃນລະບົບຍ່ອຍອາຫານ ແລະ ການຕອບສະໜອງຕໍ່ປະສິດທິພາບຂອງນົກຕໍ່ກັບສານປັບປຸງທີ່ອີງໃສ່ກົດຟໍມິກ. ການລວມວິທີການຫຼາຍຢ່າງເພື່ອລະບຸລັກສະນະໜ້າທີ່ຂອງລະບົບຍ່ອຍອາຫານໄດ້ຢ່າງຖືກຕ້ອງກວ່າຄວນຊ່ວຍໃຫ້ການພັດທະນາຍຸດທະສາດການເສີມກົດອິນຊີທີ່ມີປະສິດທິພາບຫຼາຍຂຶ້ນ ແລະ ໃນທີ່ສຸດກໍ່ປັບປຸງການຄາດຄະເນສຸຂະພາບ ແລະ ປະສິດທິພາບທີ່ດີທີ່ສຸດຂອງນົກ ໃນຂະນະທີ່ຈໍາກັດຄວາມສ່ຽງດ້ານຄວາມປອດໄພຂອງອາຫານ.
SR ໄດ້ຂຽນບົດວິຈານນີ້ດ້ວຍການຊ່ວຍເຫຼືອຈາກ DD ແລະ KR. ຜູ້ຂຽນທຸກຄົນໄດ້ປະກອບສ່ວນຢ່າງຫຼວງຫຼາຍຕໍ່ວຽກງານທີ່ນຳສະເໜີໃນບົດວິຈານນີ້.
ຜູ້ຂຽນປະກາດວ່າບົດວິຈານນີ້ໄດ້ຮັບທຶນຈາກບໍລິສັດ Anitox ເພື່ອເລີ່ມຕົ້ນການຂຽນ ແລະ ການພິມເຜີຍແຜ່ບົດວິຈານນີ້. ຜູ້ໃຫ້ທຶນບໍ່ມີອິດທິພົນຕໍ່ທັດສະນະ ແລະ ບົດສະຫຼຸບທີ່ສະແດງອອກໃນບົດຄວາມວິຈານນີ້ ຫຼື ການຕັດສິນໃຈເຜີຍແຜ່ມັນ.
ຜູ້ຂຽນທີ່ຍັງເຫຼືອປະກາດວ່າການຄົ້ນຄວ້າດັ່ງກ່າວໄດ້ດຳເນີນໄປໂດຍບໍ່ມີສາຍພົວພັນທາງການຄ້າ ຫຼື ທາງດ້ານການເງິນໃດໆທີ່ອາດຈະຖືກຕີຄວາມວ່າເປັນການຂັດແຍ້ງທາງຜົນປະໂຫຍດທີ່ອາດເກີດຂຶ້ນ.
ດຣ. DD ຂໍສະແດງຄວາມຂອບໃຈຕໍ່ການສະໜັບສະໜູນຈາກວິທະຍາໄລຈົບການສຶກສາຂອງມະຫາວິທະຍາໄລ Arkansas ຜ່ານທຶນການສຶກສາຄູສອນທີ່ໂດດເດັ່ນ, ພ້ອມທັງການສະໜັບສະໜູນຢ່າງຕໍ່ເນື່ອງຈາກໂຄງການຊີວະວິທະຍາຈຸລັງ ແລະ ໂມເລກຸນຂອງມະຫາວິທະຍາໄລ Arkansas ແລະ ພະແນກວິທະຍາສາດອາຫານ. ນອກຈາກນັ້ນ, ຜູ້ຂຽນຂໍຂອບໃຈ Anitox ສຳລັບການສະໜັບສະໜູນໃນເບື້ອງຕົ້ນໃນການຂຽນບົດວິຈານນີ້.
1. Dibner JJ, Richards JD. ການໃຊ້ຢາຕ້ານເຊື້ອເພື່ອສົ່ງເສີມການເຕີບໂຕໃນກະສິກຳ: ປະຫວັດສາດ ແລະ ກົນໄກການອອກລິດ. ວິທະຍາສາດສັດປີກ (2005) 84:634–43. doi: 10.1093/ps/84.4.634
2. Jones FT, Rick SC. ປະຫວັດຄວາມເປັນມາຂອງການພັດທະນາ ແລະ ການເຝົ້າລະວັງຢາຕ້ານເຊື້ອໃນອາຫານສັດປີກ. ວິທະຍາສາດສັດປີກ (2003) 82:613–7. doi: 10.1093/ps/82.4.613
3. Broom LJ. ທິດສະດີການຍັບຍັ້ງຍ່ອຍຂອງຕົວສົ່ງເສີມການເຕີບໂຕຂອງຢາຕ້ານເຊື້ອ. ວິທະຍາສາດສັດປີກ (2017) 96:3104–5. doi: 10.3382/ps/pex114
4. Sorum H, L'Abe-Lund TM. ການຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອໃນເຊື້ອແບັກທີເຣັຍທີ່ຕິດຕໍ່ຈາກອາຫານ - ຜົນສະທ້ອນຂອງການລົບກວນໃນເຄືອຂ່າຍພັນທຸກໍາຂອງເຊື້ອແບັກທີເຣັຍທົ່ວໂລກ. ວາລະສານສາກົນກ່ຽວກັບຈຸລິນຊີວິທະຍາອາຫານ (2002) 78:43–56. doi: 10.1016/S0168-1605(02)00241-6
5. Van Immerseel F, Cauwaerts K, Devriese LA, Heesebroek F, Ducatel R. ສານເສີມອາຫານສັດສຳລັບຄວບຄຸມ Salmonella ໃນອາຫານສັດ. ວາລະສານໂລກກ່ຽວກັບວິທະຍາສາດສັດປີກ (2002) 58:501–13. doi: 10.1079/WPS20020036
6. Angulo FJ, Baker NL, Olsen SJ, Anderson A, Barrett TJ. ການໃຊ້ຢາຕ້ານເຊື້ອໃນກະສິກຳ: ການຄວບຄຸມການສົ່ງຕໍ່ຄວາມຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອໄປສູ່ມະນຸດ. ການສຳມະນາໃນພະຍາດຕິດຕໍ່ໃນເດັກ (2004) 15:78–85. doi: 10.1053/j.spid.2004.01.010
7. Lekshmi M, Ammini P, Kumar S, Varela MF. ສະພາບແວດລ້ອມການຜະລິດອາຫານ ແລະ ວິວັດທະນາການຂອງການຕ້ານທານຢາຕ້ານເຊື້ອໃນເຊື້ອພະຍາດທີ່ມາຈາກສັດໃນມະນຸດ. ຈຸລິນຊີວິທະຍາ (2017) 5:11. doi: 10.3390/microorganisms5010011
8. Lourenço JM, Seidel DS, Callaway TR. ບົດທີ 9: ຢາຕ້ານເຊື້ອ ແລະ ໜ້າທີ່ຂອງລຳໄສ້: ປະຫວັດສາດ ແລະ ສະຖານະພາບປັດຈຸບັນ. ໃນ: Ricke SC, ບັນນາທິການ. ການປັບປຸງສຸຂະພາບລຳໄສ້ໃນສັດປີກ. Cambridge: Burley Dodd (2020). ໜ້າ 189–204. DOI: 10.19103/AS2019.0059.10
9. ຣິກ SC. ເລກທີ 8: ອະນາໄມອາຫານ. ໃນ: Dewulf J, van Immerzeel F, eds. ຄວາມປອດໄພທາງຊີວະພາບໃນການຜະລິດສັດ ແລະສັດຕະວະແພດ. Leuven: ACCO (2017). ໜ້າ 144–76.